AKTIVITAS METABOLISME MIKROBA

MAKALAH BIOTEKNOLOGI




AKTIVITAS METABOLISME MIKROBA




KELOMPOK 4
SUHENDRA ISKANDAR (H311 08 266)
FEROSDIANA PAGA (H311 06 501)
ASBULLAH AHMAD (H311 08 261)
FADLIAH (H311 08 264)
MEITY JOLANDA KAROMA (H311 08 262)
PUTRI SEPTIA ANDINI (H311 08 265)
DEWIANTI POPANG P. (H311 08 270)










JURUSAN KIMIA
FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM
UNIVERSITAS HASANUDDIN
MAKASSAR
2011
DAFTAR ISI

BAB 1. PENDAHULUAN………………………………………………………………..1
BAB II. TINJAUAN PUSTAKA…………………………………………………………2
A. KEBUTUHAN ENERGI BAGI MIKROBA…………………………………………2
B. KETERATURAN DAN PEMECAHAN KARBOHIDRAT………………………..13
C. METABOLIT PRIMER DAN SEKUNDER………………………………………..21
BAB IV. PENUTUP……………………………………………………………………..31
DAFTAR PUSTAKA……………………………………………………………………32

BAB I
PENDAHULUAN

Mikroorganisme atau mikroba adalah organisme mikroskopik yang sebagian besar berupa satu sel yang terlalu kecil untuk dapat dilihat menggunakan mata telanjang. Mikroba berukuran sekitar seperseribu milimeter (1 mikrometer) atau bahkan kurang, walaupun ada juga yang lebih besar dari 5 mikrometer. Karenanya, mikroba hanya bisa dilihat dengan menggunakan alat bantu berupa mikroskop.
Bakteri memiliki berbagai aktivitas biokimia (pertumbuhan dan perbanyakan) dengan menggunakan raw material (nutrisi) yang diperoleh dari lingkungan sekitarnya. Transformasi biokimia dapat timbul didalam dan diluar dari bakteri yang diatur oleh katalis biologis yang dikenal sebagai enzim. Setiap bakteri memiliki kemampuan dalam menggunakan enzim yang dimilikinya untuk degradasi karbohidrat, lemak, protein, dan asam amino. Metabolisme atau penggunaan dari molekul organik ini biasanya menghasilkan produk yang dapat digunakan untuk identifikasi dan karakterisasi bakteri. pengamatan aktivitas biokimia atau metabolisme mikroorganisme yang diketahui dari kemampuan mikroorganisme untuk menggunakan dan menguraikan molekul yang kompleks seperti karbohidrat, lemak, protein dan asam nukleat. Selain itu dilakukan pula pengamatan pada molekul-molekul sederhana seperti asam amino dan monosakarida. Dan hasil dari berbagai uji ini digunakan untuk perincian dan identifikasi mikroorganisme. Penggunaan zat hara tergantung dari aktivitas metabolisme mikroba. Metabolisme seringkali menghasilkan hasil sampingan yang dapat digunakan untuk identifikasi mikroorganisme. Pengamatan aktivitas metabolisme diketahui dari kemampuan mikroorganisme untuk menggunakan dan menguraikan molekul yang kompleks seperti zat pati, lemak, protein dan asam nukleat. Selain itu pengamatan juga dilakukan pada molekul yang sederhana seperti amino dan monosakarida.
Mikroba terdapat dimana-mana dalam alam. Mikroba dapat ditemui mulai dari dasar lautan yang paling dalam sampai ke puncak gunung yang paling tinggi. Mikroba ada yang hidup dalam air dingin, juga ada yang tahan hidup dalam air panas pada suhu tinggi bahkan ada yang sampai 250 derajat Celcius. (extremophilic).
Mikroba menjadi salah satu tumpuan pengembangan bioteknologi. Beberapa aspek dari mikroba menjadi sumber ketakutan. HIV, SARS, flu burung, antraks merupakan topik-topik yang menimbulkan ketakutan luar biasa bagi manusia, tetapi melalui riset dan teknologi mampu mendatangkan dana.






























BAB II
TINJAUAN PUSTAKA

A. KEBUTUHAN ENERGI BAGI MIKROBA
Untuk pertumbuhannya, mikroorganisme membutuhkan senyawa-senyawa nutritif yang digunakan untuk sintesa komponen sel dan untuk menghasilkan energi. Untuk menghasilkan komponen sel tersebut dan energi dalam bentuk ATP maka dibutuhkan sumber seperti karbohidrat, lemak, protein, vitamin, dan beberapa jenis mineral (Djide dkk., 2007).
Di dalam tubuh mikroorganisme terjadi proses metabolisme yaitu suatu proses perubahan senyawa yang satu menjadi senyawa lain. Proses metabolisme mencakup semua reaksi kimia dan biologi yang terjadi di dalam sel mikroorganisme. Metabolisme mikroorganisme dikenal dua proses, yaitu (Djide dkk., 2007) :
1. Proses katabolisme di mana terjadi pembentukan energi.
2. Proses anabolisme di mana dibutuhkan energi.
Oleh karena itu, di dalam sel mikroorganisme terjadi dua proses utama, yaitu:
1. Produksi energi dari berbagai substrat yang tersedia.
2. Pembentukan intermediet yang dibutuhkan untuk produksi biokimia dan komponen sel lainnya.
Nutrien dibutuhkan oleh mikroba sebagai sumber energi. Energi tersebut diperoleh dari nutrien melalui proses katabolisme. Katabolisme dapat terjadi melalui dua cara, yakni secara aerob dan anaerob. Katabolisme nutrien secara aerob memerlukan oksigen bebas dalam mengoksidasi nutrien untuk memperoleh energi. Sementara, katabolisme anaerob tidak memerlukan oksigen bebas. Energi dipergunakan oleh mikroba layaknya makhluk hidup lain yaitu tumbuh, berkembang, bergerak, bereproduksi, dan lain-lain (Fitria, 2009).
Nutrien utama yang menjadi sumber energi utama bagi mikroba adalah karbohidrat. Tiap mikroorganisme memecah karbohidrat menjadi bentuk yang berbeda-beda secara anaerob ataupun aerob. Beberapa contoh hasil pemecahan karbohidrat oleh mikroorganisme antara lain (Djide dkk., 2007):
1. Secara Anaerob










2. Secara Aerob


Di samping untuk menghasilkan energi, pemecahan karbohidrat juga bertujuan untuk menghasilkan metabolit primer dan metabolit sekunder (Djide dkk., 2007).
Medium pertumbuhan (disingkat medium) adalah tempat untuk menumbuhkan mikroba. Mikroba memerlukan nutrisi untuk memenuhi kebutuhan energi dan untuk bahan pembangun sel, untuk sintesa protoplasma dan bagian-bagian sel lain. Setiap mikroba mempunyai sifat fisiologi tertentu, sehingga memerlukan nutrisi tertentu pula (Rao, 1994).
Susunan kimia sel mikroba relatif tetap, baik unsur kimia maupun senyawa yang terkandung di dalam sel. Dari hasil analisis kimia diketahui bahwa penyusun utama sel adalah unsur kimia C, H, O, N, dan P, yang jumlahnya + 95 % dari berat kering sel, sedangkan sisanya tersusun dari unsur-unsur lain. Apabila dilihat susunan senyawanya, maka air merupakan bagian terbesar dari sel, sebanyak 80-90 %, dan bagian lain sebanyak 10-20 % terdiri dari protoplasma, dinding sel, lipida untuk cadangan makanan, polisakarida, polifosfat, dan senyawa lain (Lunggani, 2007).
Tabel 1. Persentasi berat kering unsur-unsur

Susunan unsur-unsur penyusun sel bakteri E. coli
Seperti halnya makhluk hidup lainnya, mikroba memerlukan energi untuk kelangsungan hidupnya. Energi diperlukan oleh mikroba untuk berbagai kegiatan, yaitu (Rao, 1994) :
1. Mempertahankan kehidupan sel.
2. Pertumbuhan dan perkembangbiakan sel.
3. Pergerakan pada mikroba yang bersifat motil (dapat bergerak).
Setiap unsur nutrisi mempunyai peran tersendiri dalam fisiologi sel. Unsur tersebut diberikan ke dalam medium sebagai kation garam anorganik yang jumlahnya berbeda-beda tergantung pada keperluannya. Beberapa golongan mikroba misalnya diatomae dan alga tertentu memerlukan silika (Si) yang biasanya diberikan dalam bentuk silikat untuk menyusun dinding sel. Fungsi dan kebutuhan natrium (Na) untuk beberapa jasad belum diketahui jumlahnya. Natrium dalam kadar yang agak tinggi diperlukan oleh bakteri tertentu yang hidup di laut, algae hijau biru, dan bakteri fotosintetik. Natrium tersebut tidak dapat digantikan oleh kation monovalen yang lain (Rao, 1994).
Jasad hidup dapat menggunakan makanannya dalam bentuk padat maupun cair (larutan). Jasad yang dapat menggunakan makanan dalam bentuk padat tergolong tipe holozoik, sedangkan yang menggunakan makanan dalam bentuk cair tergolong tipe holofitik. Jasad holofitik dapat pula menggunakan makanan dalam bentuk padat, tetapi makanan tersebut harus dicernakan lebih dulu di luar sel dengan pertolongan enzim ekstraseluler. Pencernaan di luar sel ini dikenal sebagai extracorporeal digestion (Machmud, 2008).
Bahan makanan yang digunakan oleh jasad hidup dapat berfungsi sebagai sumber energi, bahan pembangun sel, dan sebagai aseptor atau donor elektron. Dalam garis besarnya bahan makanan dibagi menjadi tujuh golongan yaitu air, sumber energi, sumber karbon, sumber aseptor elektron, sumber mineral, faktor tumbuh, dan sumber nitrogen (Machmud, 2008).
1. Air
Air merupakan komponen utama sel mikroba dan medium. Funsi air adalah sebagai sumber oksigen untuk bahan organik sel pada respirasi. Selain itu air berfungsi sebagai pelarut dan alat pengangkut dalam metabolisme.
2. Sumber energi
Ada beberapa sumber energi untuk mikroba yaitu senyawa organik atau anorganik yang dapat dioksidasi dan cahaya terutama cahaya matahari.
3. Sumber karbon
Sumber karbon untuk mikroba dapat berbentuk senyawa organik maupun anorganik. Senyawa organik meliputi karbohidrat, lemak, protein, asam amino, asam organik, garam asam organik, polialkohol, dan sebagainya. Senyawa anorganik misalnya karbonat dan gas CO2 yang merupakan sumber karbon utama terutama untuk tumbuhan tingkat tinggi.
4. Sumber aseptor elektron
Proses oksidasi biologi merupakan proses pengambilan dan pemindahan elektron dari substrat. Karena elektron dalam sel tidak berada dalam bentuk bebas, maka harus ada suatu zat yang dapat menangkap elektron tersebut. Penangkap elektron ini disebut aseptor elektron. Aseptor elektron ialah agensia pengoksidasi. Pada mikrobia yang dapat berfungsi sebagai aseptor elektron ialah O2, senyawa organik, NO3-, NO2-, N2O, SO4-, CO2, dan Fe3+.
5. Sumber mineral
Mineral merupakan bagian dari sel. Unsur penyusun utama sel ialah C, O, N, H, dan P. unsur mineral lainnya yang diperlukan sel ialah K, Ca, Mg, Na, S, Cl. Unsur mineral yang digunakan dalam jumlah sangat sedikit ialah Fe, Mn, Co, Cu, Bo, Zn, Mo, Al, Ni, Va, Sc, Si, Tu, dan sebagainya yang tidak diperlukan jasad. Unsur yang digunakan dalam jumlah besar disebut unsur makro, dalam jumlah sedang unsur oligo, dan dalam jumlah sangat sedikit unsur mikro. Unsur mikro sering terdapat sebagai ikutan (impurities) pada garam unsur makro, dan dapat masuk ke dalam medium lewat kontaminasi gelas tempatnya atau lewat partikel debu. Selain berfungsi sebagai penyusun sel, unsur mineral juga berfungsi untuk mengatur tekanan osmose, kadar ion H+(kemasaman, pH), dan potensial oksidasi-reduksi (redox potential) medium.
6. Faktor tumbuh
Faktor tumbuh ialah senyawa organik yang sangat diperlukan untuk pertumbuhan (sebagai prekursor, atau penyusun bahan sel) dan senyawa ini tidak dapat disintesis dari sumber karbon yang sederhana. Faktor tumbuh sering juga disebut zat tumbuh dan hanya diperlukan dalam jumlah sangat sedikit. Berdasarkan struktur dan fungsinya dalam metabolisme, faktor tumbuh digolongkan menjadi asam amino, sebagai penyusun protein; base purin dan pirimidin, sebagai penyusun asam nukleat; dan vitamin sebagai gugus prostetis atau bagian aktif dari enzim.
7. Sumber nitrogen
Mikroba dapat menggunakan nitrogen dalam bentuk amonium, nitrat, asam amino, protein, dan sebagainya. Jenis senyawa nitrogen yang digunakan tergantung pada jenis jasadnya. Beberapa mikroba dapat menggunakan nitrogen dalam bentuk gas N2 (zat lemas) udara. Mikroba ini disebut mikrobia penambat nitrogen.
Berdasarkan sumber energi yang digunakan, mikroba dapat dibedakan atas dua grup, yaitu (Winarno dan Faedianz, 1990):
1. Organisme fototrof, yaitu organisme yang menggunakan sinar matahari untuk menghasilkan energi. Berdasarkan sumber karbon yang digunakan, organisme fototrof dibedakan lagi sebagai berikut:
Tabel 2. Perbedaan organisme fotoautotrof dan fotoheterotrof
Organisme Sumber Sumber Contoh
Fotoototrof
Fotoheterotrof Matahari
Matahari CO2
Senyawa Organik Tanaman, ganggang
Tanaman, ganggang biru-hijau

2. Organisme kimotrof, yaitu organisme yang menggunakan senyawa kimia untuk menghasilkan energi. Berdasarkan sumber karbon yang digunakan, organisme kimotrof dapat dibedakan lagi sebagai berikut:
Tabel 3. Perbedaan organisme kimotrof dan kimoheterotrof
Organisme Sumber Sumber Contoh
Kimoototrof
Kimoheterotrof Matahari
Senyawa kimia CO2
Senyawa organik Bakteri litotrof
Hewan, protozoa, fungi, bakteri

Organisme fotoheterotrof mungkin bersifat obligat atau fakultatif, tergantung pada persediaan sumber energi. Organisme fotoheterotrof obligat hidupnya sangat tergantung pada sumber energi dari sinar matahari, sedangkan yang bersifat fakultatif, jika sumbr energi dari matahari sangat berkurang, misalnya dalam keadaan gelap, organisme tersebut dapat berubah sifatnya menjadi kimoheterotrof. Demikian pula organisme kimoototrof, ada yang bersifat obligat atau fakultatif. Organisme kimoototrof obligat hidupnya sangat tergantung pada adanya sumber CO2, sedangkan yang bersifat fakultatif jika sumber CO2 sangat kurang, organisme tersebut akan berubah sifatnya menjadi kimoheterotrof (Winarno dan Faedianz, 1990).
Semua reaksi yang menghasilkan energi pad bakteri yang bersifat kimotrofik merupakan reaksi oksidasi-reduksi, yaitu pemindahan atom hidrogen atau elektron dari satu senyawa ke senyawa lainnya. Untuk dapat digunakan sebagai sumber energi, harus terjadi reaksi oksidasi reduksi dimana diperlukan persediaan suatu oksigen dan reduktan dalam jumlah berlebih. Oksidasi adalah pelepasan elektron dari suatu atom atu molekul yang bertindak sebagai donor hidrogen yang disebut reduktan, sedangkan reduksi adalah penambahan elektron pada suatu aseptor hidrogen yang disebut oksidan (Winarno dan Faedianz, 2007).
Oksidan : AH2 A + 2H
Reduksi : B + 2H BH2
Hasil kedua reaksi tersebut menunjukkan oksidasi senyawa AH2 oleh senyawa B sebagai berikut (Winarno dan Faedianz, 1990):
AH2 + B BH2 + A
Dalam hal ini AH2 adalah suatu reduktan, sedangkan senyawa B adalah oksidan. Senyawa yang dapat berfungsi sebagai oksidan atau reduktan mungkin berupa senyawa organik atau anorganik. Berdasarkan jenis senyawa yang digunakan sebagai oksidan atau reduktan, maka reaksi oksidasi yang menghasilkan energi pada mikroba dapat dibedakan sebagai berikut (Winarno dan Faedianz, 1990):
Tabel 4. Perbedaan organisme litotrofik dan organotrofik
Donor elektron Anorganik Akseptor elektron rganik
Anorganik (litotrofik) Respirasi Tidak terjadi
Organik (organotrofik) Respirasi Fermentasi

Organisme litotrof atau kimolitotrof, termasuk di antaranya beberapa jenis bakteri, adalah organisme yang memperoleh energi melalui oksidasi suatu reduktan anorganik, misalnya sulfur atau amonia. Organisme litotrof pada umumnya bersifat ototrof, yaitu mendapatkan sumber karbon dari CO2. Organisme yang tergolong organotrof mengoksidasi donor hidrogen yang berupa senyawa organik contohnya pada hewan, fungi dan kebanyakan bakteri. Jadi istilah litotrofik dan organotrofik menunjukkan perbedaan dalam donor elektronnya (Fardianz, 1992).
Cara Mikroba Memperoleh Energi
Selama ini telah dikenal beberapa macam cara metabolisme oleh mikroba untuk mendapatkan energi, misalnya dengan cara respirasi aerobik atau anaerobik, fotosintesa dan fermentasi (Fardianz, 1992).
1. Respirasi
Sel-sel yang melakukan respirasi pada umumnya mengandung enzim oksidase dan oleh karena itu mempunyai kecenderungan untuk menggunakan oksigen (O2) sebagai aseptor elektron terakhir. Molekul O2 merupakan substrat yang baik untuk direduksi pada muatan yang sangat positif (E0 = + 0,82 volt) dan tersedia dalam jumlah yang banyak di udara. Dengan demikian sel yang menjalankan respirasi dapat lebih efisien mengubah substrat menjadi energi bila dibandingkan dengan sel-sel yang melakukan fermentasi (Fardianz, 1992).
Elektron – elektron di dalam sistem respirasi ini berasal dari DPNH+H+ , yaitu hasil oksidasi dari substrat. Pasangan elektron ini dalam bentuk DPNH+H+ diubah melalui flavoprotein atau FAD dan citochroma menjadi energi dalam bentuk ATP (adenosin-ribosa-triphosphat) sebagai berikut (Fardianz, 1992):

Gambar 1. flavoprotein atau FAD dan citochroma menjadi energi dalam bentuk ATP
Pada umumnya respirasi selalu menggunakan oksigen (respirasi aerobik), tetapi beberapa sel dapat pula melakukan respirasi tanpa menggunakan oksigen dari luar tetapi menggunakan bahan anorganik yang ada di dalam substrat. Bahan-bahan anorganik ini bertindak sebagai aseptor elektron terakhir. Respirasi semacam ini disebut respirasi anaerobik seperti terlihat pada skema berikut ini (Fardianz, 1992):

Senyawa-senyawa anorganik yang dapat digunakan sebagai aseptor elektron adalah nitrat, sulfat atau CO2. Respirasi dibagi menjadi dua yaitu (Fardianz, 1992):
1. Respirasi Aerobik
Pada respirasi aerobik, oksigen bertindak sebagai akseptor hidrogen, dan reaksi oksigen dengan hydrogen akan membentuk air. Dengan kata lain, respirasi aerobic adalah reaksi oksidasi substrat menjadi CO2 dan air, membentuk energi dalam bentuk ATP. Transpor atom hydrogen dari substrat ke oksigen berlangsung melalui sitokroma. Pigmen – pigmen tersebut melakukan reaksi oksidasi – oksidasi, dimana sitokroma yang terakhir akan dioksidasi oleh oksigen membentuk air. Energi yang dikeluarkan dari reaksi hidrogen dan oksigen digunakan untuk membentuk ATP. Untuk setiap pasang atom Hidrogen yang teroksidasi akan terbentuk 3 molekul ATP. Berikut ini adalah skema proses respirasi pada organisme organotrof :



substrat reaksi – reaksi
pendahuluan







2. Respirasi Anaerobik
Beberapa bakteri tidak menggunakan oksigen sebagai oksidan, tetapi menggunakan senyawa anorganik seperti sulfat dan nitrat. Proses demikian disebut respirasi anaerobic. Sebagai contoh, bakteri dari jenis Desulfovibrio melakukan oksidasi senyawa organic menggunakan sulfat sebagai oksidan, dimana sulfat akan mengalami reduksi menjadi sulfide. Bakteri dari jenis tersebut tidak dapat menggunakan oksigen sebagai aseptor electron.

2. Fermentasi
Fermentasi merupakan teknologi yang memanfaatkan aktivitas mikroba secara efektif yang bersifat menguntungkan manusia. Fermentasi dapat terjadi karena adanya aktivitas mikroba penyebab fermentasi pada substrat organik yang sesuai. Terjadinya fermentasi dapat menyebabkan perubahan sifat bahan pangan sebagai akibat pemecahan komponen-komponen bahan tersebut. Jika cara pengawetan yang lain ditujukan untuk mengurangi jumlah mikroba, maka proses fermentasi adalah sebaliknya yaitu memperbanyak jumlah mikroba dan menggiatkan metabolismenya. Tetapi jenis mikroba yang digunakan sangat terbatas yaitu disesuaikan dengan hasil akhir yang dikehendaki (Winarno et al., 1980). Hasil fermentasi tergantung pada jenis bahan pangan (substrat), macam mikroba dan kondisi lingkungan yang mempengaruhi pertumbuhan dan metabolisme mikroba tersebut. Mikroba yang bersifat fermentatif dapat mengubah karbohidrat dan turunan-turunannya menjadi alkohol, asam CO2. Mikroba proteolik dapat memecah protein dan komponen-komponen nitrogen lainnya sehingga menghasilkan bau busuk yang tidak diinginkan sedangkan mikroba lipolitik akan memecah atau menghidrolisis lemak, fosfolipida dan turunannya dengan menghasilkan bau tengik (Winarno dan Fardianz, 1990).
Fermentasi adalah suatu reaksi oksidasi-reduksi di dalam sistem biologi yang menghasilkan energi, dimana sebagai donor dan aseptor elektron digunakan senyawa organik. Senyawa organik yang biasanya digunakan adalah karbohidrat dalam bentuk glukosa. Senyawa tersebut akan diubah oleh reaksi reduksi dengan katalis enzim menjadi sutu bentuk lain misalnya aldehida, dan dapat dioksidasi menjadi asam (Winarno dan Fardianz, 1990).
Sel-sel yang melakukan fermentasi mempunyai enzim-enzim yang akan mengubah hasil dari reaksi oksidasi, dalam hal ini adalah asam, menjadi suatu senyawa yang mempunyai muatan lebih positif sehingga dapat menangkap elektron atau bertindak sebagai aseptor elektron terakhir dan menghasilkan energi. Secara lebih jelas reaksi tersebut dapat diterangkan melalui skema sebagai berikut (Fardianz, 1992) :

Di dalam proses fermentasi, kapasitas mikroba untuk mengoksidasi tergantung dari jumlah aseptor elektron terakhir yang dapat dipakai. Secara lebih singkat skema proses fermentasi adalah sebagai berikut (Fardianz, 1992) :




3. Metabolisme Litotropik atau Autotropik
Bila pada respirasi anaerobik senyawa-senyawa anorganik dapat digunakan sebagai aseptor elektron, maka beberapa bakteri tertentu dapat menggunakan senyawa-senyawa anorganik sebagai donor elektron. Metabolisme semacam ini disebut metabolisme litotropik atau autotropik, sedangkan metabolisme yang menggunakan senyawa organik sebagai donor elektron disebut metabolisme organotropik (Winarno dan Faedianz, 1990).
Senyawa-senyawa anorganik yang dapat digunakan oleh bakteri litotropik sebagai donor elektron misalnya senyawa nitrogen tereduksi (nitrit, amonia). Bakteri-bakteri ini biasanya menggunakan CO2 sebagai sumber utama dari karbon (Winarno dan Faedianz, 1990).
Bakteri hidrogen akan mengoksidasi molekul hidrogen sebagai berikut (Djide dkk. 2007) :
2H2 + O2 2H2O
“Nitrifying bacteria” terdiri dari dua jenis yaitu Nitrosomonas sp. yang mengoksidasi amonia menjadi nitrit, dan Nitrobacter sp. yang mengoksidasi nitrit menjadi nitrat sebagai berikut (Djide dkk. 2007) :

Bakteri sulfur yang tidak berwarna misalnya Thiobacillus sp. dapat mengoksidasi beberapa senyawa yang mengandung sulfur misalnya (Djide dkk. 2007) :

Bakteri sulfur yang lainnya misalnya Beggiatoa sp. dan Thiothrix sp. dapat menyimpan sulfur di dalam selnya, sebagai hasil oksidasi dari H2S. Jika persediaan H2S habis maka sulfur persediaan tersebut akan digunakan untuk metabolisme dan dioksidasi menjadi sulfat (Djide dkk. 2007).
Bakteri besi termasuk Ferrobacillus sp. dapat mengoksidasi besi ferro menjadi ferri sebagai berikut (Djide dkk. 2007) :
4Fe2+ + 4H+ +O2 4Fe3+ + 2H2O

B. KETERATURAN DAN PEMECAHAN KARBOHIDRAT
Pada umumnya pemecahan karbohidrat berlangsung melalui suatu degradasi dari gula monosakarida yaitu glukosa menjadi asam piruvat. Pemecahan glukosa menjadi asam piruvat dapat melalui dua cara yaitu sistem heksosa diphosphat (HDP) dan heksosa monophosphat (HMP) (Fitria, 2007).
Pada umumnya mikroba hanya dapat menjalankan salah satu sistem, akan tetapi beberapa mikroba tertentu dapat melakukan kedua sistem pemecahan gula tersebut. Hal ini dapat digunakan untuk mengidentifikasi mikroba yaitu dengan cara melihat hasil-hasil dari pemecahan glukosa (Fitria, 2007).
Secara singkat rumus glukosa dapat dituliskan sebagai berikut (Fitria, 2007):

Heksosa Diphosphat (HDP)
Tahap pertama dari pemecahan glukosa secara sistem heksosa diphosphat (HDP) adalah phosphorilasi glukosa, yaitu pemindahan ikatan phosphat yang mempunyai energi tinggi dari ATP kedalam glukosa pada atom C nomor enam. Reaksi ini berlangsung dengan bantuan enzim kinase dan katalisator Mg2+ (Fitria, 2007).

Tahap kedua terjadi reaksi isomerisasi dari glukosa-6-phosphat (G-6-P), yang menghasilkan 2-keto-glukosa-6-phosphat yaitu fruktosa-6-phosphat (F-6-P), dengan pertolongan enzim isomerase dan katalisator Mg2+. Reaksi ini adalah suatu reaksi bolak-balik (Fitria, 2007).

Tahap ketiga adalah pemindahan phosphat baru dari ATP ke F-6-P pada atom C nomor 1, dengan pertolongan enzim kinase. Hasilnya adalah fruktosa-1, 6-diphosphat (F-1, 6-diP), dan reaksinya berjalan satu arah (Fitria, 2007).

Tahap keempat adalah pecahnya F-1, 6-diP pada ikatan antara atom Cnomor tiga dan nomor empat menjadi bentuk aldol, yaitu dengan pertolongan enzim aldolase. Reaksi tersebut berjalan bolak-balik dengan hasil reaksinya adalah dehidroksi-aseton-phosphat (DHAP) dan gliseraldehida-3-phosphat (G-3-P) (Fitria, 2007).

Agar lebih jelas cara pemecahan tersebut dapat diterangkan sebagai berikut (Fitria, 2007):

Tahap kelima terjadi oksidasi dari aldehida dengan pertolongan enzim dehidrogenase, dan sebagai akseptor elektron adalah DPN. Reaksi ini adalah reaksi bolak-balik dan menghasilkan asam 1,3-diphospho-gliserat (G-1,3-diP). Energi yang dihasilkan dari oksidasi ini digunakan untuk membentuk ikatan kimia yang mempunyai energi tinggi (Fitria, 2007).

Tahap keenam terjadi perpindahan ikatan kimia yang mempunyai energi tinggi dari atom C nomor satu ke ADP dengan menghasilkan ATP dan asam 3-phospho-gliserat (asam 3-P-gliserat), dengan pertolongan enzim kinase. Reaksi tersebut adalah reaksi bolak-balik (Fitria, 2007).

Tahap ketujuh terjadi setelah isomerisasi phosphat pada asam gliserat dari atom C nomor tiga ke atom C nomor dua, dengan pertolongan enzim isomerase. Reaksi ini disertai dengan dehidrogenasi yang menghasilkan H2O dan berjalan bolak-balik (Fitria, 2007).

Pelepasan H2O pada tahap ketujuh akan dapat meninggikan energi dari ikatan phodphat, sehingga pada tahap kedelapan ikatan phosphat akan berpindah ke ADP untuk membentuk ATP dengan pertolongan enzim kinase. Hasilnya adalah asam piruvat, dan reaksi ini berjalan bolak-balik (Fitria, 2007).


Skema Heksosa Diphosphat (HDP)
Melalui sistem HDP, setiap molekul glukosa dapat menghasilkan dua molekul triose phosphat. Di dalam reaksi tersebut diperlukan dua molekul ATP. Masing-masing triose phosphat yang terbentuk kemudian dapat menghasilkan satu molekul asam piruvat, dua molekul ATP dan sepasang elektron yaitu DPNH+H+. Jadi secara singkat reaksi pemecahan glukosa tersebut dapat dituliskan sebagai berikut (Fitria, 2007):

Didalam reaksi tersebut terlihat bahwa pemecahan sebuah molekul glukosa menjadi dua molekul asam piruvat memerlukan dua molekul ATP dan menghasilkan empat molekul ATP serta dua pasang elektron (2 DPNH+H+), sehingga hasil akhirnya adalah dua molekul ATP dan dua pasang elektron (Fitria, 2007).
Asam piruvat yang merupakan hasil pemecahan glukosa melalui sistem HDP adalah senyawa yang penting karena melalui senyawa ini dapat dihasilkan banyak sekali jenis senyawa-senyawa lainnya misalnya asam laktat, alkohol, asam formiat, asam butirat, asam asetat, asam propionat dan sebagainya (Fitria, 2007).
Didalam reaksi perubahan asam piruvat menjadi senyawa-senyawa tersebut biasanya terjadi proses oksidasi-reduksi dengan menggunakan DPNH + H+ sebagai donor elektron (Fitria, 2007).

Heksosa Monophosphat (HMP)
Hanya sebagian kecil atau beberapa jenis bakteri tertentu saja yang dapat melakukan pemecahan glukosa dengan cara heksosa monophosphat (HMP). Berbeda dengan sistem HDP, maka sistem HMP ini tidak menghasilkan senyawa pertengahan (intermediate) berupa heksosa diphosphat (fruktosa-1,6-diphosphat). Pada sistem HMP setelah glukosa mengalami phosphorilasi pada atom C nomor enam dengan pertolongan enzim kinase dan ATP, kemudian dioksidasi menjadi asam 6-phospho-glukonat (6-PG) dengan pertolongan enzim dehidrogenase sebagai berikut (Fitria, 2007) :

Asam 6-phospho glukonat kemudian mengalami dekarboksilasi dan oksidasi dengan pertolongan enzim dekarboksilase sehingga menghasilkan CO2 dan suatu pentosa yaitu D-ribulose-5-phosphat (Ru-5-P), seperti terlihat pada reaksi dibawah (Fitria, 2007) :

Beberapa jenis mikroba yang menjalankan fermentasi dapat mmecah gula pentosa phosphat (C5) menjadi senyawa dua karbon (C2) dan triose phosphat sebagai berikut (Fitria, 2007) :

Triose phosphat (G-3-P) kemudian dioksidasi sehinga menjadi asam piruvat, sedangkan elektron-elektron yang dihasilkan dari oksidasi ini digunakan untuk mereduksi asam piruvat menjadi asam laktat, seperti terlihat pada reaksi dibawah ini (Fitria, 2007) :

Senyawa dua karbon yang terbentuk (C-C) direduksi untuk menampung elektron-elektron yang berasal dari hasil oksidasi G-6-P menjadi 6-PG dan dari 6-PG menjadi Ru-5-P, dengan menghasilkan alkohol seperti terlihat pada reaksi dibawah ini (Fitria, 2007) :

Secara singkat hasil fermentasi glukosa menurut sistem HMP dapat dituliskan sebagai berikut (Fitria, 2007) :

Ternyata beberapa jenis bakteri tertentu selain menggunakan sistem HDP juga dapat menggunakan sistem fermentasi HMP jika suatu ketika mengalami kekurangan enzim-enzim yang iperlukan dalam pemecahan glukosa secara HDP. Contoh dari bakteri tersebut misalnya Leuconostoc sp (Fitria, 2007).
Tahap-tahap pemecahan glukosa menjadi asam laktat menurut sistem HMP dapat digambarkan dalam suatu diagram seperti dibawah ini (Fitria, 2007) :

Skema Heksosa Monophosphat (HMP)
Pemecahan Gula Secara “Entner doudoroff”
Cara lain untuk memecah gula adalah secara “Entner Doudoroff” yang dikenal sebagai “Entner Doudoroff Split”. Cara ini ditemukan pada beberapa bakteri tertentu terutama pada bakteri golongan pseudomonad (Fitria, 2007).
Dengan cara “entner Doudoroff” ini glukosa mula-mula mengalami phosphorilasi menjadi glukosa-6-phosphat (G-6-P) dan kemudian dioksidasi menjadi 6-phospho glukonat (6-PG). Selanjutnya 6-PG mengalami dehidrasi (-H2O) dan dipecah menjadi asam piruvat dan triose phosphat, seperti terlihat pada reaksi di bawah ini (Fitria, 2007) :

Mikroba yang melakukan fermentasi dengan cara ini akan mengoksidasi triose phosphat dan mengubahnya menjadi asam piruvat. Beberapa asam piruvat direduksi menjadi asam laktat dan sisanya akan mengalami dekarboksilasi menjadi CO2 dan asetaldehida. Kemudian asetaldehida direduksi menjadi etil alkohol, seperti terlihat pada gambar dibawah ini (Fitria, 2007) :

C. Metabolit Primer dan Sekunder
1. Metabolit Primer
Metabolit primer adalah senyawa yang berupa produk akhir dalam metabolisme dengan bobot molekul yang kecil dan digunakan sebagai bahan dasar pembangun makromolekul atau dikonversikan menjadi koenzim. Selain itu termasuk senyawa-senyawa intermediet pada jalur Embden-Meyerhof, Pentosa Phosphate,siklus asam trikarboksilat (siklus Krebs). Contohnya: Asam-asam organik seperti asam sitrat, asam fumarat, asam amino, dan lain-lain (Fardiaz, 1992).
Senyawa metabolisme primer merupakan senyawa yang dihasilkan oleh makhluk hidup dan bersifat essensial bagi proses metabolisme sel tersebut. Senyawa ini dikelompokkan menjadi 4 kelompok makromolekul yaitu karbohidrat, protein, lipid,dan asam nukleat (Fardiaz, 1992).
A. Karbohidrat
Karbohidrat merupakan kelompok makromolekul yang tersusun atas atom C,H,dan O. kelompok ini sering disebut juga gula-gula hidrokarbon.
Berdasarkan jumlah monomer penusunnya, karbohidrat terbagi atas:
1. Monosakarida yang tersusun atas 1 monomer,
2. Disakarida yang tersusun atas 2 monomer,
3. Oligosakarida yang tersusun atas 3-10, dan
4. Polisakarida yang tersusun atas lebih dari 10 monomer.
B. Protein
Protein merupakan suatu senyawa makromolekul yang tersusun atas atom C, H, O, N, dan S. Berdasarkan fungsinya protein dikelompokkan menjadi dua kelompok besar, yaitu:
1. Protein fungsional yaitu kelompok Enzim, dan
2. Protein Struktural yaitu protein yang menyusun bagian struktural dari dalam sel seperti protein integral dan protein perifer yang menyusun bagian membran sel.
C. Lipid
Lemak merupakan golongan senyawa metabolit primer yang bersifat hidrofobik. Senyawa ini dapat dibagi menjadi beberapa kelompok yaitu:
1. Lemak yang tersusun atas asam lemak dan gliserol,
2. Sterol yang merupakan penyusun membran sel makhluk hidup, dan
3. Kolesterol
D. Nukleat
Asam nukleat merupakan komponen yang terdiri atas atom C, H, O, dan P. Biasanya asam nukleat terdiri atas 3 bagian yaitu gula ribosa, basa nitrogen, dan fosfat.
Berdasarkan fungsinya, asam nukleat dibagi menjadi 4 kelompok yaitu :
1. Sebagai komponen materi genetik, contohnya : DNA, RNA
2. Sebagai energi kimia, contohnya: ATP, GTP, UTP
3. Sebagai kofaktor, contohnya : NAD, FAD, Koenzim A
4. Sebagai komponen regulator, contohnya : cAMP, cGMP
2. Metabolit Sekunder
Metabolit sekunder adalah senyawa metabolit yang tidak esensial bagi pertumbuhan organisme dan ditemukan dalam bentuk yang unik atau berbeda-beda antara spesies yang satu dan lainnya. Setiap organisme biasanya menghasilkan senyawa metabolit sekunder yang berbeda-beda, bahkan mungkin satu jenis senyawa metabolit sekunder hanya ditemukan pada satu spesies dalam suatu kingdom. Senyawa ini juga tidak selalu dihasilkan, tetapi hanya pada saat dibutuhkan saja atau pada fase-fase tertentu. Fungsi metabolit sekunder adalah untuk mempertahankan diri dari kondisi lingkungan yang kurang menguntungkan, misalnya untuk mengatasi hama dan penyakit, menarik polinator, dan sebagai molekul sinyal (Fardiaz, 1992).
Senyawa metabolit sekunder diklasifikasikan menjadi 3 kelompok utama, yaitu (Fardiaz, 1992):
• Terpenoid (Sebagian besar senyawa terpenoid mengandung karbon dan hidrogen serta disintesis melalui jalur metabolisme asam mevalonat). Contohnya monoterpena, seskuiterepena, diterpena, triterpena, dan polimer terpena.
• Fenolik (Senyawa ini terbuat dari gula sederhana dan memiliki cincin benzena, hidrogen, dan oksigen dalam struktur kimianya). Contohnya asam fenolat, kumarina, lignin, flavonoid, dan tanin.
• Senyawa yang mengandung nitrogen. Contohnya alkaloid dan glukosinolat.
Sebagian besar tanaman penghasil senyawa metabolit sekunder memanfaatkan senyawa tersebut untuk mempertahankan diri dan berkompetisi dengan makhluk hidup lain di sekitarnya. Tanaman dapat menghasilkan metabolit sekunder (seperti: quinon, flavonoid, tanin, dll.) yang membuat tanaman lain tidak dapat tumbuh di sekitarnya. Hal ini disebut sebagai alelopati. Berbagai senyawa metabolit sekunder telah digunakan sebagai obat atau model untuk membuat obat baru, contohnya adalah aspirin yang dibuat berdasarkan asam salisilat yang secara alami terdapat pada tumbuhan tertentu. Manfaat lain dari metabolit sekunder adalah sebagai pestisida dan insektisida, contohnya adalah rotenon dan rotenoid. Beberapa metabolit sekunder lainnya yang telah digunakan dalam memproduksi sabun, parfum, minyak herbal, pewarna, permen karet, dan plastik alami adalah resin, antosianin, tanin, saponin, dan minyak volatil (Fardiaz, 1992).
Beberapa contoh dari metabolit sekunder adalah (Fardiaz, 1992):
Kelas Contoh Senyawa Contoh Sumber Efek dan kegunaan
SENYAWA MENGANDUNG NITROGEN
Alkaloid Nikotin, kokain, teobromin Tembakau, coklat Mempengaruhi neurotransmisi dan menghambat kerja enzim
TERPENOID
Monoterpena Mentol, linalool Tumbuhan mint dan banyak tumbuhan lainnya Mempengaruhi neurotransmisi, menghambat transpor ion, anestetik
Diterpen Gossypol Kapas Menghambat fosforilasi, toksik
Triterpena, glikosida kardiak (jantung) Digitogenin Digitalis (Foxglove digitalis sp.) Stimulasi otot jantung, memengaruhi transpor ion
Sterol spinasterol Bayam Mempengaruhi kerja hormon hewan
Asam fenolat Kafeat, klorogenat Semua tanaman Menyebabkan kerusakan oksidatif, timbulnya warna coklat pada buah dan wine.
Tannins gallotanin, tanin terkondensasi oak, kacang-kacangan Mengikat protein, enzim, menghambat digesti, antioksidan.
Lignin Lignin Semua tanaman darat Struktur, serat

Metabolit sekunder, hasil matebolisme yang tidak digunakan untuk proses pertumbuhan, tetapi untuk pertahanan diri, contoh: protein, asam lemak, karbohidrat, senyawa antimikroba, dll. Pada jalur biosintesis metabolit sekunder dapat terdiri dari berbagai jalur, mulai dari yang sederhana sampai dengan jalur yang rumit. Umumnya berasal atau berawal dari metabolit primer (asetil CoA, asam mevalonat, asam sikimat, dll). Metabolit sekunder ini unik untuk setiap mikroorganisme, bergantung pada lingkungan habitatnya. Ada beberapa contoh metabolit sekunder pada mikroorganisme yaitu: antibiotic, pigmen, vitamin, dan lain-lain (Fardiaz, 1992).
Beberapa contoh metabolit sekunder mikroba dan manfaatnya (Fardiaz, 1992) :
1. Antibiotik: penisilin (Penicillium chrysogeum), sefalosporin (Cephalosporium acremonium).
2. Imunosupresan: silosporin (Trichoderma polysoprum).
3. Bidang pertanian: growth promoter Zearalonone (Gibberella zeae).
4. Enzim: amylase (Asoegillus niger), lipase (Pseudomonas aeruginosa).
5. Pigmen: ankaflavin (Monascus purpureus).
Metabolit sekunder mikroba yang merupakan senyawa toksik (Fardiaz, 1992):
1. Toksik dari fungi mikotoksin, contoh: aflatoksin (Aspergillus flavus), sitrinin (Penicillium citrinum).
2. Toksik dari bakteri bakterotoksin, contoh: endotoksin.
3. Dapat dimanfaatkan untuk merancang obat berdasarkan struktur molekul toksin.
Penicillium di atas selai menghasilkan patulin, senyawa yang paling awal dirancang untuk menjadi antibiotik, tetapi ternyata toksik untuk mamalia (Fardiaz, 1992).







Aflotoksin diproduksi dari anggota Aspergillus parasiticus yang dihasilkan melalui jalur poliketida. Jalur ini kurang lebih mempunyai 20 langkah, dan hasil akhir menghasilkan suatu keanekaragaman dari campuran ( bisfuranokumarin) yang dapat dikonversi satu ke yang lain (Fardiaz, 1992).















Pada umumnya metabolit sekunder mikroorganisme merupakan makromolekul yang disebut biomakromolekul. Mikroorganisme yang dimanfaatkan atau dimanipulasi agar menghasilkan produk yang bermanfaat dan dapat diproduksi dalam skala industri disebut mikroba industri (Fardiaz, 1992) .
Mikroorganisme atau Mikroba Industri (Fardiaz, 1992) :
1. Prokariot (Eubakteri, Archaebakteri)
2. Eukariot (Fungi: Kapang, Ragi, Jamur, Algae, Protozoa)
3. Pathogen dan non-patogen
4. Pemanfaatan dalam bioteknologi klasik dan bioteknolgi modern.
5. Streptomyces merupakan kelompok bakteri yang paling banyak dimanfaatkan metabolit sekundernya di bidang farmasi.
Kapang yang sering dimanfaatkan: Ascomycota, Deuteromycota. Proses pertumbuhan akan menghasilkan senyawa-senyawa yang dikenal sebagai metabolit. Senyawa metabolit ada dua jenis, yakni metabolit primer dan metabolit sekunder (Djide, 2007).
Metabolit primer adalah hasil metabolisme yang digunakan untuk kelangsungan hidup organisme misalnya untuk pertumbuhan. Contohnya, asam amino, asetil Ko-A, karbohidrat, asam nukleat, nukleotida, asam sitrat, dan lain-lain. Metabolit sekunder adalah hasil metabolisme yang tidak digunakan untuk proses pertumbuhan organisme tetapi untuk keperluan lain, misalnya untuk pertahanan diri. Untuk mikroorganisme contohnya, asam indol asetat, giberelin, penisilin, dan aflatoksin (Rao, 1994).
Beberapa ahli mengemukakan bahwa metabolit primer juga mencakup senyawa-senyawa intermediet yang terbentuk selama katabolisme melalui Embden-Meyerhof-Parnas, siklus pentose, dan siklus trikarboksilat. Dengan demikian, asam-asam organik seperti asam sitrat, asam fumarat, asam glukonat, asam laktat, dan sebagainya juga digolongkan sebagai metabolit primer (Djide, 2007).
Salah satu contoh produksi metabolit primer yaitu produksi asam amino melalui proses mikrobial antara lain adalah produksi L-asam glutamat, yang dikenal dengan nama monosodium glutamat (Djide, 2007).

Gambar 2. Biosintesis L-asam glutamat
Selama fase stasioner beberapa kultur mikroorganisme mensintesa persenyawaan-persenyawaan yang tidak dihasilkan selama fase tropofase dan tidak mempunyai fungsi yang nyata pada metabolisme mikroorganisme. Persenyawaan-persenyawaan ini digolongkan sebagai metabolit sekunder dan fase di mana metabolit tersebut dihasilkan dikenal dengan nama iodophasa (Djide dkk., 2007).
Aflatoksin adalah suatu metabolit sekunder yang terbentuk setelah fase logaritmik pertumbuhan kapang Aspergillus flavus dan Aspergillus parasiticus (Lunggani, 2007).
Aflatoksin menarik perhatian mikrobiologiawan di Inggris pada tahun 1960 ketika tidak terbilang banyaknya kalkun dan bebek yang mati karena makanannya yang berupa bubur dedak kacang tanah terkontaminasi Aspergillus flavus. Manivestasi penyakit pada kalkun yang terinfeksi tampak karena adanya kerusakan hati dan ginjal hewan oleh aflatoksin. Sejak permulaan ledakan penyakit kalkun ini, telah banyak dilakukan penelitian mengenai aspek bikimiawi dan mikrobiologis aflatoksin dan sekarang telah diketahui bahwa aflatoksin terdiri dari beberapa unsur seperti aflatoksin yang secara kromatografis dapat dipisahkan yaitu B1, B2, G1, G2, M1, M2, dan seterusnya (Rao, 1994).
Aflatoksin diketahui memiliki sifat karsinogenik dan terutama mempengaruhi hewan-hewan seperti burung, ikan, lembu, domba, kambing, dan lain-lain. Manusia jarang terpengaruh oleh aflatoksin kecuali bila makan kacang tanah yang mengandung Aspergillus flavus dalam jumlah besar. Terdapat laporan yang menyiratkan terjadinya penimbunan sejumlah besar aflatoksin di dalam air susu ibu yang diberi makan makanan yang berasal dari biji-bijian yang berjamur (Rao, 1994).
Produksi aflatoksin secara eksperimental dengan menginokulasikan Aspergillus flavus telah dilaporkan dapat dilakukan terhadap beberapa komoditi pertanian seperti kopra, gandum, padi, biji kapas, gandum hitam, kacang tanah, jagung, dan semanggi. Tampaknya, terdapat tingkat kekhususan galur dalam produksi aflatoksin sedangkan isolate lainnya tidak. Survei pada biji-bijian domestik mengenai kadar aflatoksinnya berdasarkan standar biji resmi Amerika Serikat menunjukkan bahwa keberadaan racun ini pada sorgum dapat sangat rendah yaitu 3-6 µg/kg biji sedangkan pada jagung kadarnya mencapai 13-15 µg/kg. Tanaman akar seperti ketela pohon, kentang, kopi, dan tanaman pakan juga diketahui terkontaminasi dengan aflatoksin. Tingginya kelembaban pada masa panen dan metode pengeringan pascapanen yang kurang tepat merupakan faktor-faktor utama yang menyebabkan masuknya jamur-jamur Aspergillus penghasil aflatoksin ke dalam biji (Rao, 1994).
Juga terdapat beberapa laporan mengenai pengaruh aflatoksin terhadap tanaman tingkat tinggi. Pengaruh ini meliputi penghambatan perkecambahan biji, induksi defisiensi klorofil, kerusakan mitokondria, gangguan pada asam nukleat terutama RNA duta dan penghambatan macam-macam sistem enzim. Racun ini menghambat pertumbuhan Rhizobium in vitro dan perbintilan akar pada kecambah semanggi kelompok (Trifolium glomeratum) yang ditumbuhkan pada agar miring. Racun ini juga menginduksi pembentukan tonjolan serupa bintil pada sistem perakaran walaupun tanpa Rhizobium (Rao, 1994).
Asam indol asetat juga merupakan salah satu metabolit sekunder pada mikroorganisme. Banyak spesies bakteri dan jamur menghasilkan asam indol asetat (IAA) dalam jumlah sedikit, terutama apabila medium pertumbuhannya ditambah dengan triptofan penyusun IAA. Misalnya, Agrobacterium tumefaciens, Ustilago maydis, Synchytrium endobioticum, Gymnosporangium juniper-virginianae, Nectria galligena, Endophyllum sempervivi, Rhizobium sp., Rhizopus suinus, dan Pseudomonas fluorescens menghasilkan IAA dalam kultur murni atau dalam asosiasi dengan tanaman tinggi. Beberapa pengaruh morfogenik yang penting dari IAA terhadap pertumbuhan tanaman adalah pemanjangan batang dan pembentukan bintil yang merupakan reaksi inang terhadap auksin (Rao, 1994).
Salah satu contoh sederhana tentang interaksi antara IAA yang dihasilkan mikroba dengan tanaman inang adalah fenomena pembengkokan bulu akar, sebagaimana terlihat pada tanaman leguminosa yang telah terinokulasi Rhizobium. Salah satu contoh IAA yang dihasilkan oleh mikroba yang menyebabkan terjadinya hipertrofi sel-sel tanaman adalah jaringan bintil mahkota (the crown-gall tissue) yang disebabkan oleh Agrobacterium tumefaciens. Struktur-struktur serupa bintil yang terlihat pada berbagai tanaman dipandang terutama disebabkan oleh IAA yang bekerjasama dengan suatu prinsip penginduksi tumor (TIP) yang belum dikenal yang dihasilkan oleh mikroorganisme penyebab. Beberapa kasus hiperauksini (penimbunan auksin di dalam jaringan tubuh inang sebagai akibat interaksi antara mikroorganisme pathogen dan tanaman inang) telah dilaporkan dalam literatur. Contoh-contoh hiperauksini adalah penyakit layu tanaman yang disebabkan oleh Verticillium yang berakibat matinya tanaman karena kekurangan air dan penyakit karat pada jagung yang disebabkan oleh Ustilago maydis yang menghasilkan bintil-bintil membulat yang besar pada daun, batang, dan tangkai bunga. Walaupun demikian, perlu diingat bahwa IAA yang dihasilkan oleh mikroorganisme-mikroorganisme parasit ini bekerjasama dengan senyawa-senyawa lain yang dihasilkan dalam tubuh inang karena adanya interaksi antara inang dan parasit (Rao, 1994).
Hidup matinya suatu mikroorganisme di alam dipengaruhi oleh kemampuannya untuk mengadaptasi terhadap lingkungan yang selalu berubah. Organisme yang beradaptasi dengan cepat dan dapat menyesuaikan proses metabolismenya untuk tumbuh secara lebih efisien akan menang dalam kompetisi dengan mikroorganisme lainnya. Mikroorganisme mempunyai beberapa mekanisme untuk mengatur metabolismenya pada keadaan perubahan lingkungan. Proses adaptasi ada dua, yaitu adaptasi genotip dan adaptasi fenotip (Djide dkk., 2007).
Dalam suatu populasi organisme, selalu terdapat mutan alami dengan frekuensi satu dalam 107 set sampai dengan satu dalam 1010 sel. Jika mutan tersebut lebih dapat dengan lingkungan daripada induknya, mutan akan tumbuh lebih cepat dan menjadi dominan dalam populasi. Adaptasi yang disertai dengan perubahan dalam gen (genom) disebut adaptasi genotip. Dibutuhkan beberapa generasi sebelum mutan genotip tersebut menggantikan genotip orang tuanya sebagai organisme dominan dalam populasi (Djide dkk., 2007).
Dalam adaptasi fenotip, penyesuaian diri terhadap lingkungan lebih cepat, yaitu kurang dari satu waktu generasi. Adaptasi demikian tidak disebabkan oleh perubahan genom sel dan disebut adaptasi fenotip. Dalam adaptasi ini, organisme menyesuaikan diri dengan cara mengatur metabolisme sehingga dapat tumbuh lebih efisien dalam kondisi atau lingkungan yang baru. Cara adaptasi dengan fenotip ini dapat dilakukan dengan cara mengatur sintesis enzim dan mengatur aktivitas enzim (Djide dkk., 2007).












BAB III
PENUTUP

Layaknya makhluk hidup lain, setiap mikroorganisme membutuhkan energi untuk menjalankan kehidupannya. Energi diperoleh dari pemecahan karbohidrat, protein, lemak, asam nukleat, nukleotida, dan sebagainya. Namun, yang paling sering terjadi adalah pemecahan karbohidrat. Di mana pemecahan nutrien ini di samping akan menghasilkan energi, juga bertujuan untuk mensintesis metabolit primer dan sekunder.
Karena kemajuan teknologi, metabolit primer dan sekunder kini telah banyak ditemukan manfaatnya. Namun, tidak jarang pula bahkan lebih banyak metabolit mikroorganisme yang bersifat toksik. Untuk inilah maka diperlukan adanya penelitian untuk pengaturan metabolit mikroorganisme ini sehingga metabolit mikroorganisme tidak akan merugikan manusia lagi tetapi justru akan mendatangkan keuntungan yang besar.



















DAFTAR PUSTAKA

Djide, N., Sartini, dan Kadir, S., 2007, Bioteknologi Farmasi, Unhas press, Makassar.

Fardiaz, S., 1992, Mikrobiologi Pangan 1, PT Gramedia Pustaka Utama, Jakarta.

Fitria, B., 2007, Pertumbuhan Bakteri (online), (http://www.farmasiku.com, diakses pada tanggal 4 April 2011 pukul 09.15 WITA).

Lunggani, A.T., 2007, Kemampuan Bakteri Asam Laktat dalam Menghambat Pertumbuhan dan Produksi Aflatoksin B2 Aspergillus flavus, BIOMA (online), 9(II)45-51, (http:www.google.com, diakses pada tanggal 24 Maret 2011 pukul 13.02 WITA).

Machmud, M., 2008, Teknik Penyimpanan dan Pemeliharaan Mikroba (online), (http://www.indobiogen.co.id, diakses pada tanggal 31 Maret 2011 Pukul 15.00 WITA).
Rao, N.S.S., 1994, Mikroorganisme Tanah dan Pertumbuhan Tanaman Edisi Kedua, UI press, Jakarta.

Winarno dan Faedianz, 1990, Biofermentasi dn Biosisntesa Protein, Angkasa, Bandung.


sejarah perkembangan baterai

BAB I
PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang
Baterai adalah alat yang mampu menghasilkan energi listrik dengan menggunakan energi kimia. Baterai belumlah dikenal di zaman dahulu kala. Orang-orang bahkan belum mengenal listrik. Penerangan hanya bersumber dari api. Seiring dengan kemajuan zaman, orang-orang terus berpikir untuk menemukan kehidupan yang lebih efisien. Manusia terus melakukan penelitian-penelitian untuk menemukan suatu cara hidup yang lebih maju.
Berawal dari penemuan elektrolit di Baghdad pada tahun 1936, dilakukan banyak penelitian untuk mengembangkan penemuan tersebut, walaupun sebelumnya telah ditemukan sel Daniell, sel Leclanche, dan sel aki, namun penelitian tentang baterai baru menjadi popular di era itu. Kajian-kajian mendalam mengenai konsep dasar yang dikembangkan dengan penelitian berkelanjutan akhirnya menuju pada suatu hal yang semakin maju seperti yang kita rasakan sekarang. Konsep-konsep dasar itu antara lain hantaran elektrolit, oksidasi-reduksi, dan sel elektrokimia.
Hantaran elektrolit mencakup kemampuan suatu larutan untuk menghantarkan listrik akibat dicelupnya dua buah elektroda (katoda dan anoda). Oksidasi-reduksi adalah suatu konsep untuk menyatakan kemampuan suatu sel elektrokimia untuk mengadakan serah-tertima elektron. Adapun sel elektrokimia adalah sel yang mampu mengubah energi listrik menjadi energi kimia atau sebaliknya serta terdiri dari dua buah elektroda (katoda dan anoda) yang dicelupkan pada suatu larutan elektrolit dengan atau tanpa jembatan garam.
Untuk mengembangkan suatu penelitian khususnya dalam hal baterai, sangat perlu unutuk menengok akan sejarah penemuan dan pembuatan baterai. Dalam makalah ini, akan dibahas mengenai sejarah baterai (awal mula ditemukannya baterai) serta dalam makalah ini pula akan dibahas mengenai tiga jenis baterai yang lebih awal ditemukan yakni sel Daniell, sel Leclanche, dan sel timbal-asam.
1.2 Tujuan Penulisan
Tujuan penulisan makalah ini adalah untuk mengetahui dan mempelajari sejarah atau awal mula penemuan dan perkembangan baterai serta mengulas penemuan sel Daniell, sel Leclanche (sel kering), dan sel timbal-asam (aki).


BAB II
TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Teori Pendahuluan
a. Hantaran Elektrolit
Penghantar listrik dapat dibagi ke dalam dua golongan. Pertama, penghantar elektronik berupa logam dan padatan garam tertentu (misalnya CdS). Dalam hal ini hantaran terjadi karena bergeraknya elektron jika diberi potensial. Kedua, penghantar elektrolitik yang sering disebut sebagai elektrolit, misalnya lelehan garam atau larutan elektrolit dalam air (Achmad, 2001).
b. Oksidasi dan Reduksi
Oksidasi adalah suatu proses di mana suatu senyawa kimia melepaskan elektron. Reduksi merupakan kebalikan dari proses oksidasi, yaitu suatu proses di mana suatu senyawa kimia menerima elektron (Bird, 1993).
c. Sel Elektrokimia
Reaksi sel elektrokimia meliputi reaksi reduksi dan reaksi oksidasi. Sel elektrokimia digunakan untuk mengubah energi kimia menjadi energi listrik atau sebaliknya. Dalam sebuah sel, energi listrik dihasilkan dengan jalan pelepasan elektron pada suatu elektroda (oksidasi) dan penerimaan elektron pada elektroda lainnya (reduksi). Elektroda yang melepaskan elektron dinamakan anoda sedangkan elektroda yang yang menerima elektron dinamakan katoda. Jadi, sebuah sel selalu terdiri dari dua bagian atau dua elektroda, setengah reaksi oksidasi akan berlangsung pada anoda dan setengah reaksi reduksi akan berlangsung pada katoda. Dengan kata lain, pada sel elektrokimia kedua setengah reaksi dipisahkan dengan maksud agar aliran listrik (elektron) yang ditimbulkan dapat dipergunakan. Salah satu faktor yang mencirikan sebuah sel adalah gaya gerak listrik (GGL) atau perbedaan potensial listrik antara anoda dan katoda. Satuan GGL adalah volt. Satuan volt dapat didefenisikan sebagai : apabila muatan satu coulomb dilakukan pada perbedaan potensial sebesar 1 volt akan dihasilkan energi sebesar 1 Joule (Bird, 1993).

2.2 Sejarah Penemuan Bakteri
Baterai tidak diketahui di zaman dahulu. Penemuan baterai berawal di Baghdad, Irak. Penemuan ini berawal ketika sebuah silinder tembaga diletakkan di tengah-tengah batang besi dalam larutan yang tidak diketahui. Larutan ini belakangan disebut elektrolit dan peristiwanya dikenal sebagai ionisasi larutan elektrolit (Monk, 2004).

2.3 Sel Daniell
Salah satu jenis baterai yang dikembangkan di awal penemuan baterai yakni sel Daniell yang terbuat dari logam tembaga dalam larutan Cu2+ sebagai katoda dan dari logam seng dalam larutan Zn2+ sebagai anoda yang di mana keduanya dihubungkan dengan jembatan garam. Walaupun baterai ini efisien, tetapi kurang dikembangkan karena jika digunakan larutan berair pada baterai ini, maka akan mudah menimbulkan bahaya percikan (Monk, 2004). Selain itu, aliran listrik yang dihasilkan tidak stabil (Purba, 2006).

Gambar 1. Sel Daniell
Tembaga merupakan salah satu unsur logam transisi yang berwarna coklat kemerahan dan merupakan konduktor panas dan listrik yang sangat baik. Seng memiliki warna putih kebiruan. Seng murni berbentuk Kristal logam dan sangat rapuh pada suhu normal. Seng tidak larut dalam air, tetapi larut dalam alkohol dan senyawa-senyawa asam (Sunardi, 2006).
Penemu elemen Daniell adalah John Frederic Daniell (Administrator, 2007). Pada Sel Daniel, elektroda Cu dibenamkan dalam larutan tembaga(II) sulfat atau CuSO4 dan elektroda seng sulfat atau ZnSO4.Pada anoda, Zn mengalami oksidasi: Zn(s)→ Zn2+(aq) + 2e-. Pada katoda, Cu mengalami reduksi: Cu2+(aq) + 2e- → Cu(s) (Administrator, 2007).
Pada sel Daniell, kawat dan lampu dihubungkan dengan kedua elektroda. Elektron-elektron yang ditarik dari seng berjalan sepanjang kawat, yang harus merupakan kawat non-reaktif, menghasilkan arus listrik yang membuat lampu menyala. Pada sel seperti ini, ion-ion sulfat memainkan peranan penting. Setelah bermuatan negatif, anion-anion ini terkumpul di anoda untuk mempertahankan keseimbangan muatan. Sebaliknya, pada katoda, ion-ion Cu2+ terakumulasi untuk mempertahankan keseimbangan muatan ini. Kedua proses ini menyebabkan sebagian tembaga terakumulasi di katoda dan elektroda seng menjadi terlarut atau meluruh ke dalam larutan. Karena kedua reaksi tidak terjadi sendiri-sendiri (independently), kedua sel harus dihubungkan dengan konduktor misalnya agar ion-ion bergerak bebas. Digunakan dua wadah keramik yang berbeda untuk masing-masing larutan. Biasanya suatu salt bridge atau jembatan garam digunakan untuk menghubungkan kedua sel. Pada sel basah seperti ini, ion-ion sulfat bergerak dari katoda menuju anoda melalui jembatan garam dan kation-kation Zn2+ bergerak dalam arah sebaliknya (Administrator, 2007).

2.4 Baterai Kering Leclanche
Sel Leclanche pertama kali diperjualkan pada tahun 1880 dan masih sangat popular di zaman sekarang. Baterai kering mampu menghasilkan beda potensial sebesar 1,6 V (Monk, 2004). Penemu elemen kering pertama pada tahun 1802 adalah Johann Wilhelm Witter (Wahyudi, 2010). Pada sel Leclanche, wadah seng dan selubung luar berfungsi sebagai anoda. Di tengah-tengah sel ditempatkan katoda karbon inert. Elektrolit yang berupa pasta terdiri dari MnO2, ZnCl2, NH4Cl, dan karbon (Bird, 1993). Setengah reaksi oksidasi yang berlangsung pada anoda yaitu Zn  Zn2+ + 2e-. Setengah reaksi oksidasi yang berlangsung pada katoda rumit, tetapi secara sederhana merupakan reaksi reduksi MnO2. Reaksinya adalah 2MnO2(s) + 2H2O(l) + 2e-  2MnO(OH)(s) + 2 OH-(aq). Adapun fungsi NH4Cl adalah untuk menghentikan pergerakan Zn2+ (Monk, 2004).
Komponen-komponen elektrolit lain berguna untuk membantu menyingkirkan produk buangan yang apabila dibiarkan menumpuk akan menghambat arus listrik. Sel Leclanche dikenal sebagai sel primer karena tidak dapat diisi kembali atau dengan kata lain reaksinya tidak dapat dibalik (Bird, 1993).

Gambar 2. Sel Leclanche

2.5 Baterai Timbal-Asam
Sel timbal-asam ditemukan oleh Plante pada tahun 1859 dan sudah dilakukan banyak modifikasi-modifikasi setelah itu dan yang kini digunakan adalah modifikasi Faure pada tahun 1881. Sel timbal asam sangat terkenal di dunia karena kemampuannya untuk diisi ulang sehingga terkenal dengan sebutan sel sekunder. Sel ini mampu menghasilkan beda potensial 2,0 Volt tiap unitnya (Monk, 2004).
Baterai timbal-asam merupakan alat tua yang cocok dengan pekerjaan stater mobil (dan merupakan satu-satunya yang ada). Selama pengisian, reaksi katodanya adalah reduksi Pb2+ dan pengendapannya sebagai timbal pada elektroda timbal yang terjadi bukanlah reduksi asam menjadi hidrogen, karena reaksi ini mempunyai rapatan arus pertukaran yang rendah pada timbal. Raksi anoda selama pengisian adalah oksidasi Pb2+ menjadi Pb4+ yang diendapkan sebagai oksida PbO2. Pada pengisian, kedua reaksi ini berlangsung sebaliknya. Karena keduanya mempunyai rapatan arus pertukaran yang sangat tinggi, maka pengisian dapat berlangsung dengan cepat. Inilah sebabnya baterai timbal dapat menghasilkan arus yang besar jika diperlukan (Atkins, 1997).
Biasanya, baterai timbal-asam disebut juga aki. Aki merupakan salah satu contoh sel sekunder karena reaksi reduksi yang berlangsung pada sel ini dapat dibalik dengan jalan mengalirkan arus listrik. Aki terdiri dari sebuah elektroda timbal dan sebuah elektroda PbO2 yang dicelupkan dalam larutan asam sulfat. Kedua ekeltroda tadi mempunyai permukaan yang luas dan disusun berdekatan satu dengan yang lain dengan menggunakan rangka yang kaku. Reaksi yang berlangsung adalah sebagai berikut (Bird, 1993):
Oksidasi : Pb(s) + HSO4-(aq)  PbSO4(s) + H+(aq) + 2e-
Reduksi : PbO2(s) + 2H+(aq) + H2SO4(aq) + 2e-  PbSO4(s) + 2H2O(aq)
Total : Pb + PbO2 + 2H2SO4  2PbSO4 + 2H2O Eosel = 2,0 Volt
Apabila digunakan dalam waktu yang cukup lama, maka kedua elektroda akan dilapisi oleh lapisan PbSO4 dan H2O yang akan mengencerkan asam sulfat yang terdapat dalam sel. Dengan memberikan arus listrik dari luar dengan arah yang berlawanan, reaksi yang terjadi akan merupakan kebalikan dari reaksi-reaksi di atas. Asam sulfat akan terbentuk kembali dan PbSO4 akan membentuk Pb dan PbO2 lagi. Jadi, dengan mengalirkan arus listrik dari luar dengan arah yang berlawanan, sel akan dapat digunakan lagi (Bird, 1993).

Gambar 3. Sel timbal-asam

BAB III
PEMBAHASAN

Konsep dasar sehingga dapat terjadinya suatu reaksi spontan yakni ketika suatu baterai digunakan untuk menghasilkan energi listrik dengan menggunakan energi kimia karena menghasilkan potensial sel yang positif. Nilai potensial sel sendiri dapat diketahui melalui serangkaian percobaan menggunakan alat potensiometer. Sebaliknya, ketika reaksi spontan tersebut dibalik, maka reaksi tersebut menunjukkan bahwa baterai diisi ulang di mana energi listirk diubah kembali menjadi energi kimia. Namun, reaksi ini hanya dapat terjadi pada reaksi yang bersifat reversibel seperti sel aki. Tetapi ada pula reaksi yang bersifat irreversibel yang tidak dapat mengelami reaksi balik yakni zat berenergi kimia yang sudah menghasilkan energi listrik tak dapat diubah kembali seperti sedia kala walaupun dialiri kembali arus listrik.
Berdasarkan buku karangan Monk berjudul “Physical Chemistry Understanding Our Chemical World”, nilai potensial reduksi standar dari reaksi Cu2+ + 2e-  Cu adalah +0,34 V, sedangkan potensial oksidasi standar dari reaksi Zn  Zn2+ + 2e- adalah +0,76 V. Dengan demikian, nilai potensial sel dari sel Daniell adalah +1,10 V. Dengan nilai potensial sel yang positif seperti ini, memang memungkinkan untuk terjadinya reaksi spontan untuk menghasilkan energi listrik.
Dengan cara yang sama pula, kita dapat menentukan bahwa sel Leclanche dan sel timbal-asam (aki) adalah penghasil energi listrik dari energi kimia yang dapat terlihat dari nilai potensial selnya yang positif. Namun bedanya, sel aki dapat mengalami reaksi balik sehingga dapat diisi ulang sementara sel Daniell dan Leclanche tidak dapat diisi ulang karena tidak dapat mengalami reaksi balik. Adapun penjelasan mengapa ada reaksi yang dapat balik, namun ada pula yang tidak adalah karena kespesifikan reaksi yang lebih lanjut dibahas oleh rekan di bahasan materi yang lain.

BAB IV
KESIMPULAN

Perkembangan pesat tentang penelitian mengenai baterai memuncak pada tahun 1936 yaitu ketika ditemukannya fenomena aneh berupa ionisasi larutan elektrolit ketika silinder tembaga dengan batang besi di tengahnya dicelupkan dalam larutan tersebut. Namun, sebelum itu sebenarnya telah ditemukan beberapa jenis baterai antara lain sel Daniell, sel Leclenche, dan sel timbal-asam.

DAFTAR PUSTAKA

Achmad, H., 2001, Kimia Larutan, Citra Aditya Bakti, Bandung.

Administrator, 2007, Penemu Batere (Volta, Daniel, Aki) (online), (http://www.facebook.com, diakses pada tanggal 25 April 2011 pukul 15.31 WITA.

Atkins, P.W., 1997, Kimia Fisika Edisi Keempat, diterjemahkan oleh Irma I. Kartohadiprodjo, Erlangga, Jakarta.

Bird, T., 1993, Kimia Fisik untuk Universitas, Gramedia, Jakarta.

Monk, P., 2004, Physical Chemistry Understanding Our Chemical World, Wiley, West Sussex.

Purba, M., 2006, Kimia untuk SMA Kelas XII, Erlangga, Jakarta.

Sunardi, 2006, 116 Unsur Kimia Deskripsi dan Pemanfaatannya, Yrama Widya, Bandung.

Wahyudi, 2010, Johann Wilhelm Ritter Penemu Sel Baterai Kering (online), (http://www.chemistry.org, diakses pada tanggal 25 April 2011 pukul 19.01 WITA).

Identifikasi Metabolit Sekunder dari Eucheuma denticulatum(Alga Laut), Montipora equituberculata (Karang Laut) dan Linckia laevigata (Bintang Laut)

Laporan Kuliah Lapangan
Kimia Organik Bahan Alam Laut

Identifikasi Metabolit Sekunder dari
Eucheuma denticulatum(Alga Laut), Montipora equituberculata (Karang Laut) dan Linckia laevigata (Bintang Laut)

Kelompok `1
St. Hapsa (H311 05 013)
Amaliah (H311 08 005)
Murniyati Muis (H311 08 007)
Abd. Rahman (H311 08 011)
Imelda Sunaryo (H311 08 258)
Suhendra Iskandar(H311 08 266)
Fitriani (H311 08 277)
Bulkis Musa (H311 08 284)
Afriana (H311 08 854)



KIMIA ANALISIS LINGKUNGAN LAUT
JURUSAN KIMIA
FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM
UNVERSITAS HASANUDDIN
MAKASSAR
2011
I. LOKASI PENELITIAN
Lokasi penelitian mata kuliah ini bertempat di Pulau Barrang Lompo.

II. WAKTU PENELITIAN
Penelitian ini dilaksanakan pada hari Sabtu, tanggal 7 Juni 2011.

III. METODE PENELITIAN
a. Bahan penelitian
- Kloroform
- Aquades
- Metanol
- FeCl3
- Bubuk Magnesium
- HCl pekat
- Arang norit
- H2SO4 pekat
- Asam asetat anhidrat
- Amoniak 0,05 M
- Dietil eter
- KOH alkaholik 20%
- kertas saring
- tissue


b. Alat penelitian
- Tabung reaksi
- Gelas kimia 600 mL
- Pipet tetes
- Plat tetes
- Corong
- Kaki tiga
- Kawat kasa
- Pinset
- Gegep
- Mortal
- Pisau
- Kompor
c. Prosedur Analisis
- Preparasi sampel
1. Sampel sebanyak kurang lebih 2 gram dipotong halus, dimasukkan ke dalam tabung reaksi, kemudian dimaserasi dengan etanol panas selama ± 15 menit.
2. Saring panas – panas ke dalam tabung reaksi dan dibiarkan seluruh etanol menguap sampai kering.
3. Tambahkan kloroform dan aquades dengan perbandingan 1:1 masing – masing sebanyak 5 mL kemudian dikocok. Selanjutnya dipindahkan ke dalam tabung reaksi, dibiarkan sejenak hingga terbentuk dua fasa. Lapisan bawah adalah kloroform digunakan untuk menganilisis senyawa terpenoid dan steroid. Lapisan atas adalah air digunakan untuk menganalisis kandungan fenolik, flavonoid dan saponin.

- Analisis sampel
1. Analisis senyawa fenolik
Sebagian dari lapisan air dimasukkan ke dalam plat tetes. Kemudian ditambahkan pereaksi FeCl3. Terbentuknya warna biru/ungu menandakan adanya kandungan fenolik.
2. Analisis flavonoid (Sianidin test)
Sebagian dari lapisan air dipipet ke dalam tabung reaksi. Kemudian dimasukkan butir bubuk Mg dan beberapa tetes HCl pekat. Terbentuknya warna orange sampai merah menandakan adanya flavonoid (kecuali untuk isoflavon).
3. Pemeriksaan saponin
Lapisan air dipindahkan ke tabung reaksi lain dan dikocok sekuat – kuatnya. Terbentuknya busa yang permanen (beberapa menit) menunjukkan adanya saponin.
4. Analisis steroid dan terpenoid
a. Lapisan kloroform dimasukkan ke dalam pipet pasteur yang di dalamnya terdapat arang (norit). Filtrat yang keluar dari pipet dimasukkan ke dalam tiga lobang pada plat tetes, dibiarkan sampai kering.
b. Ke dalam salah satu plat tetes ditambhakan asam sulfat pekat, ke dalam lubang yang lain ditambahkan setetes asam asetat anhidrat dan setetes asam sulfat pekat, plat tetes yang ketiga digunakan sebagai blanko.
c. Terbentuknya warna biru ungu menandakan adanya steroid sedangkan bila terbentuknya warna merah menandakan adanya kandungan terpenoid.
5. Analisis kandungan alkaloid
a. Potong kecil–kecil 2 sampai 4 gram sampel kemudian dihaluskan dan ditambahkan sejumput pasir dan 10 mL kloroform.
b. Setelah dihaluskan, ditambahkan 10 mL kloroform amoniak 0,05 N kemudian diaduk lagi perlahan.
c. Saring larutan dengan corong kecil, di dalamnya diletakkan kapas sebagai saringan. Diamsukkan hasil saringan ke dalam sebuah tabung reaksi.
d. Tambahkan 10 tetes asam sulfat 2 N dan kocok perlahan (di bolak-balikan) tabung reaksi tersebut. Biarkan hingga terbentuk lapisan asam dan kloroform.
e. Pipet lapisan asam dan pindahkan ke dalam tabung reaksi.
f. Tambahkan setetes pereaksi Mayer.
g. Reaksi positif ditandai dengan adanya kabut putih hingga gumpalan putih/endapan +1 sampai dengan +4. Untuk standarisasi, dapat digunakan larutan kinik sulfat (+1 = 1:1000, +2 = 1:2500, +3 = 1:500, dan +4 = 1:100).


6. Analisis terhadap karotenoid
10 gram sampel dirajang halus dan dimaserasi dengan etanol selama 24 jam. Ekstrak etanol pekat dimaserasi dengan dietil eter 25 mL, fraksi eter disafonifiaksi dengan 5 ml KOH alkoholik 20% selama 10 menit. Warna merah orange (terang) campuran hasil saponifikasi memberikan indikasi karotenoid.
IV. Material
a. Eucheuma denticulatum
Klasifikasi alga laut (Eucheuma denticulatum) menurut Herbarium Bandungense (2011) adalah sebagai berikut:
Kingdom Plantae
Phylum Rhodophyta
Class Florideophyceae
Orde Gigartinales
Family Solieriaceae
Genus Euchema
Species Eucheuma denticulatum

Hasil Identifikasi
Jenis Senyawa yang Diidentifikasi
Terpenoid Steroid Alkaloid Fenolik Flavonoid Saponin Karotenoid
- ++ + - - - -
Keterangan:
- = Tidak ada
+ = Sangat Sedikit
++ = Sedikit
+++ = Banyak
++++ = Sangat Banyak

b. Linckia laevigata
Klasifikasi bintang laut (Linckia laevigata) menurut (Syafi’i, 2009) adalah sebagai berikut:
Kingdom Animalia
Phylum Echinodermata
Class Asteroidea
Orde Valvatida
Family Ophidiasteridae
Genus Linckia
Species Linckia laevigata
Hasil Identifikasi
Jenis Senyawa yang Diidentifikasi
Terpenoid Steroid Alkaloid Fenolik Flavonoid Saponin Karotenoid
- +++ + - + + ++++

Keterangan:
- = Tidak ada
+ = Sangat Sedikit
++ = Sedikit
+++ = Banyak
++++ = Sangat Banyak

c. Montipora aequituberculata
Klasifikasi karang laut (Montipora aequituberculata) adalah sebagai berikut:
Kingdom Animalia
Phylum Cnidaria
Class Asteroidea
Orde Scleractinia
Family Acroporidae
Genus Montipora
Species Montipora aequituberculata

Hasil Identifikasi
Jenis Senyawa yang Diidentifikasi
Terpenoid Steroid Alkaloid Fenolik Flavonoid Saponin Karotenoid
+ + + - - - -

Keterangan:
- = Tidak ada
+ = Sangat Sedikit
++ = Sedikit
+++ = Banyak
++++ = Sangat Banyak


DAFTAR PUSTAKA

Anonim, 2011, Klasifikasi Tumbuhan Eucheuma denticulatum, Herbarium Bandungense Sekolah Ilmu dan Teknologi Hayati, (online) (http://www.sith.itb.ac.id/herbarium/index.php?c=herbs&view=detail&spid=236186, diakses tanggal 23 Mei 2011 pukul 22.35).

Wibawa, M. A., 2010, Eucheuma denticulatum, (online) (http://zonaikan.wordpress.com/2010/04/15/eucheuma-denticulatum-e-spinosum/, diakses tanggal 23 Mei 2011 pukul 22.36).

Syafi,i, 2009, laporan praktikum biologi laut (avertebrata laut), (online) (http://syafiih.wordpress.com/2009/06/24/laporan-praktikum-biologi-laut-avertebrata-laut/, diakses tanggal 23 Mei 2011 pukul 23.14).

Kurniatriyuli, 2010, Montipora aquituberculata, (online) (http://kurniatriyuli.wordpress.com/, diakses tanggal 23 Mei 2011 pukul 23.56).

Perhitungan Buffer Posfat

Seperti kebanyakan buffer lainnya, buffer posfat tidak akan mengalami perubahan pH pada penambahan sedikit asam atau basa serta penambahan volume. Buffer posfat memiliki pH antara 5,3-8,0. Buffer posfat terdiri dari campuran Na2HPO4 dan NaH2PO4 di mana molekul-molekul tersebut mampu menyerap air. Buffer posfat berfungsi untuk mengatur pH larutan agar tetap konstan di area yang mendekati nilai 7. Besarnya nilai pH pada larutan tersebut bergantung pada komposisi pencampuran Na2HPO4 dan NaH2PO4 tersebut. Buffer posfat akan menghambat aktivitas dari beberapa metabolik enzim termasuk karboksilase, fumarase, dan posfoglukomutase (Purba, 2006).
Na2HPO4 dan NaH2PO4 menyebabkan iritasi saluran pencernaan jika tertelan serta iritasi saluran pernapasan jika terhirup (Philipsburg, 2008).
Berikut disajikan tabel pembuatan buffer pH 5,3-8,0 untuk buffer Na2HPO4-NaH2PO4 untuk konsentrasi Na2HPO4 0,1 M dan NaH2PO4¬ 0,1 M dengan volume 100 mL (Mulyono, 2006).
pH Volume Na2HPO4 (mL) Volume NaH2PO4 (mL) pH Volume Na2HPO4 (mL) Volume NaH2PO4 (mL) pH Volume Na2HPO4 (mL) Volume NaH2PO4 (mL)
5,3 2,6 97,4 6,3 22,5 77,5 7,3 76,8 23,2
5,4 3,2 96,8 6,4 26,7 73,3 7,4 80,8 19,2
5,5 4,0 96,0 6,5 31,7 68,3 7,5 84,1 15,9
5,6 5,1 94,9 6,6 37,5 62,5 7,6 87,0 13,0
5,7 6,4 93,6 6,7 43,3 56,7 7,7 89,4 10,6
5,8 8,0 92,0 6,8 49,1 50,9 7,8 91,5 8,5
5,9 9,9 90,1 6,9 55,1 44,9 7,9 93,2 6,8
6,0 12,3 87,7 7,0 61,1 38,9 8,0 94,7 5,3
6,1 15,1 84,9 7,1 66,6 33,4
6,2 18,6 81,4 7,2 72,0 28,0

Nah, sekarang untuk membuat larutan Na2HPO¬4 dan NaH2PO4 dapat dilakukan melalui langkah-langkah di bawah ini (Mulyono, 2006) :
-Larutan Na2HPO4 0,1 M :
Timbang 17,799 gram Na2HPO4.2H2O kemudian masukkan ke dalam labu takar 1 L. setelah itu, tambahkan akuades sebanyak 250 mL lalu homogenkan. Tambahkan lagi akuades sampai tanda batas lalu homogenkan kembali.
-Larutan NaH2PO4 0,1 M :
Timbang 15,601 gram NaH2PO4.2H2O kemudian masukkan ke dalam labu takar 1 L. Setelah itu, tambahkan akuades sebanyak 250 mL lalu homogenkan. Tambahkan lagi akuades sampai tanda batas lalu homogenkan kembali.
Kita ketahui bersama bahwa rumus kemolaran adalah :
M=n/V= gram/(Mr .V)
Maka langkah kerja di atas dapat dibuktikan kebenarannya. Penguraian 1 mol Na2HPO4.2H2O akan menghasilkan 1 mol Na2HPO4 dan 2 mol H2O sehingga dapat dikatakan bahwa jumlah mol Na2HPO4.2H2O ekivalen dengan jumlah mol Na2HPO4. Begitu pula dengan penguraian 1 mol NaH2PO4.2H2O akan menghasilkan 1 mol NaH2PO4 dan 2 mol H2O sehingga jumlah mol NaH2PO4.2H2O ekivalen dengan jumlah mol NaH2PO4.
- Untuk larutan Na2HPO4 0,1 M
M=gram/(Mr .V)= (17,799 gram)/(177,99 gram/mol.1 L) = 0,1 M
- Untuk larutan NaH2PO4 0,1 M
M=gram/(Mr .V)= (15,601 gram)/(156,01 gram/mol.1 L) = 0,1 M
Sekarang, kita akan mencoba untuk menghitung manual perbandingan volume pada buffer posfat untuk menghasilkan pH tertentu. pH yang kita pilih kali ini adalah 6,0; 6,2; 6,8; dan 7,4. Sebagai catatan bahwa kita akan membuat larutan buffer bervolume 100 mL di mana Ka dari NaH2PO4 adalah 1,65x10-7.
-Untuk pH 6,0 :
[H+] = k_a x n_a/n_g =
10-pH = 1,65 x 10-7 x (M_a V_a)/(M_g V_g )
10-6,0 = 1,65 x 10-7 x (0,1 M x V_a)/(0,1 M x V_g )
10-6 = 1,65 x 10-7 x (100-x)/x (misal x adalah volume Na2HPO4)
6,0606x = 100 – x
6,0606 x + x = 100
7,0606 x = 100
x = 100/7,0606 = 14,1631
Jadi, volume Na2HPO4 adalah 14,1631 mL dan volume NaH2PO4 adalah 100 mL -14,1631 mL = 85,8369 mL
-Untuk pH 6,2 :
[H+] = k_a x n_a/n_g =
10-pH = 1,65 x 10-7 x (M_a V_a)/(M_g V_g )
10-6,2 = 1,65 x 10-7 x (0,1 M x V_a)/(0,1 M x V_g )
6,3096 x 10-7 = 1,65 x 10-7 x (100-x)/x (misal x adalah volume Na2HPO4)
3,8240x = 100 – x
3,8240x + x = 100
4,8240 x = 100
x = 100/4,8240 = 20,7297
Jadi, volume Na2HPO4 adalah 20,7297 mL dan volume NaH2PO4 adalah 100 mL -20,7297 mL = 79,2703 mL
-Untuk pH 6,8 :
[H+] = k_a x n_a/n_g =
10-pH = 1,65 x 10-7 x (M_a V_a)/(M_g V_g )
10-6,8 = 1,65 x 10-7 x (0,1 M x V_a)/(0,1 M x V_g )
1,5849x10-7 = 1,65 x 10-7 x (100-x)/x (misal x adalah volume Na2HPO4)
0,9605x = 100 – x
0,9605 x + x = 100
1,9605 x = 100
x = 100/1,9605 = 51,0074
Jadi, volume Na2HPO4 adalah 51,0074 mL dan volume NaH2PO4 adalah 100 mL -51,0074 mL = 48,9926 mL
-Untuk pH 7,4 :
[H+] = k_a x n_a/n_g =
10-pH = 1,65 x 10-7 x (M_a V_a)/(M_g V_g )
10-7,4 = 1,65 x 10-7 x (0,1 M x V_a)/(0,1 M x V_g )
3,9811x10-8 = 1,65 x 10-7 x (100-x)/x (misal x adalah volume Na2HPO4)
0,2413x = 100 – x
0,2413x + x = 100
1,2413x = 100
x = 100/1,2413 = 80,5607
Jadi, volume Na2HPO4 adalah 80,5607 mL dan volume NaH2PO4 adalah 100 mL -80,5607 mL = 19,4393 mL
Data-data yang diperoleh di atas ternyata agak berbeda dengan apa yang tercatat di tabel (data paktikum). Hal ini tentu saja karena berbagai faktor luar antara lain viskositas larutan buffer, perbedaan densitas pada suhu yang berbeda, dan berbagai macam faktor-faktor lainnya termasuk akibat pembulatan perhitungan.




















DAFTAR PUSTAKA

Mulyono, 2006, Membuat Reagen Kimia di Laboratorium, PT Bumi Aksara, Jakarta.

Philipsburg, 2008, Material Safety Data Sheet Sodium Phospate Monobasic Monohydrate (online), http://www.sciencebiotech.net, diakses pada tanggal 23 September 2010 pada pukul 15.32 WITA.

Purba, M., 2006, Kimia Umum, Erlangga, Jakarta.

Pemisahan oleh Pengendapan

3.1 Pengamatan Umum
Pada era awal, kimia protein satu-satunya cara praktis untuk memisahkan jenis protein yang berbeda yang disebabkan bagian dari campuran untuk endapan melalui perubahan dari beberapa properti dari pelarut. Endapan dapat disaring dan dipekatkan dalam pelarut asli. Prosedur-prosedur ini tetap menjadi metode sangat penting dari pemurnian protein, kecuali penyaringan yang sebagian besar telah digantikan oleh sentrifugasi. Presipitat protein adalah agregat molekul protein yang cukup besar sehingga menghasilkan hasil yang rendah untuk disentrifugasi. Dalam beberapa kasus, agregasi dilanjutkan dengan presipitasi flocculates, tetapi biasanya gerakan dan tabrakan partikel dalam suspensi tetap berukuran kecil. Hal ini mengakibatkan penyumbatan kertas filter dan sentrifugasi yang baik memerlukan lebih dari 1 g contoh. Berbagai metode mendapatkan endapan yang dijelaskan dalam bagian terpisah di bawah ini.
Klasifikasi protein diklasifikasikan berdasarkan kelarutannya dan meskipun klasifikasi ini sebagian besar telah dilupakan hari ini, kata-kata yang masih digunakan sehari-hari ketika berbicara albumin serum atau imunoglobulin. Globulin didefinisikan sebagai protein tidak larut dalam larutan garam rendah, serum globulin dapat diendapkan dengan hanya mengencerkan serum dengan air, di mana albumin tersisa di larutan. Perilaku globulin adalah contoh presipitasi isoelektrik dalam penggaraman-dalam jangkauan. Klasifikasi ini membingungkan karena beberapa protein yang tidak larut pada pH 6, tetapi larut dalam garam yang rendah pada pH 8. Namun demikian, ada protein yang benar sesuai dengan deskripsi globulin. Protein-protein jenis ini adalah protein pada umumnya dengan kelarutan rendah dalam media air yang cenderung memiliki kandungan asam amino hidrofobik substansial di permukaannya. Sebaliknya, ada banyak albumin dengan kelarutan tinggi terhadap air dan sifat hidrofobik rendah.
Distribusi residu hidrofilik dan hidrofobik pada permukaan molekul protein adalah fitur yang menentukan kelarutan dalam berbagai pelarut. Meskipun kelompok hidrofobik cenderung terkonsentrasi di sekitar bagian dalam molekul protein, jumlah besar berada di permukaan, kontak dengan pelarut. Kelompok hidrofobik pada permukaan molekul protein adalah penting dalam menentukan perilaku dari molekul sebagaimana dengan kelompok polar lainnya. Pelarut selalu berbasis air, meskipun ada alasan untuk menduga akan mungkin untuk mengisolasi protein membran yang tidak terpisahkan dengan menggunakan pelarut nonair. Sifat-sifat pelarut air dapat dimanipulasi untuk mengubah kelarutan protein oleh perubahan kekuatan ion, pH, penambahan pelarut organik larut, zat terlarut inert lainnya atau polimer, atau kombinasinya bersama-sama dengan variasi suhu. Prosedur yang paling banyak digunakan adalah penggunaan garam netral menyebabkan presipitasi selektif. Ini adalah subyek dari dua bagian selanjutnya.
3.2 Kelarutan Protein pada Konsentrasi Garam Rendah
Sebagian besar enzim yang ada di cairan sel sebagai protein larut, sering dalam sup terkonsentrasi yang mungkin sebanyak 40 % protein. Sehingga mereka sangat larut dalam kondisi garam fisiologis, suatu kekuatan ion umumnya sekitar 0,15 - 0,2 M, dan pH netral. Setelah diekstrak, kondisi ini dapat dengan mudah bervariasi, meskipun gampang untuk meningkatkan konsentrasi protein (dengan menghilangkan pelarut), atau untuk mengurangi kekuatan ionik substansial (dengan menghilangkan ion dengan berat molekul rendah). Kelarutan adalah hasil interaksi dengan kutub, interaksi pelarut ion berair dengan garam ini, dan untuk beberapa hal , elektrostatik antara agregat molekul. Agregat kecil menetralkan daya tarik yang kuat.
Dalam rentang kekuatan ion dari nol sampai fisiologis, beberapa bentuk protein presipitat karena kekuatan tidak mencukupi. Misalnya, permukaan hidrofobik yang tinggi berarti interaksi rendah dengan kelompok dibebankan pelarut dan lebih sedikit untuk berinteraksi dengan garam. Biaya keseluruhan mendekati nol meminimalkan tolakan elektrostatik, dan mungkin, dekat dengan titik isoelektrik, mengakibatkan daya tarik elektrostatik molekul satu sama lain. Hal ini disebut presipitasi isoelektrik protein globulin yang menunjukkan kelarutan minimum sekitar titik isoelektrik, yang mungkin cukup rendah untuk menghasilkan presipitasi. Dalam campuran protein yang sangat rumit oleh protein kopresipitasi berbeda dengan agregat dengan sifat yang sama untuk membentuk presipitasi isoelektrik. Dalam banyak kasus, presipitasi isoelektrik dapat dibentuk dalam jaringan ekstrak dengan menurunkan pH menjadi antara 6,0 dan 5,0. Ini bukan sekedar agregasi protein larut, yang termasuk agregat untuk partikulat bahan seperti ribosom dan fragmen membran, seperti yang dijabarkan sebelumnya.
Kelarutan protein jenis globulin menurun dengan berkurangnya konsentrasi garam. Ini jarang dapat dimanfaatkan dengan ekstrak kasar sejak penurunan dua kali lipat dalam garam hanya dapat dicapai dengan mudah dengan menambahkan dalam volume yang sama dari air, jika kelarutan tidak menurun oleh lebih dari dua kali lipat, tidak ada yang diperoleh. Namun, itu bisa menjadi properti yang berguna (meskipun kadang-kadang ada ketidaknyamanan) pada tahap berikutnya ketika penghilangan garam dicoba oleh dialisis atau dengan filtrasi gel. Pada dialisis terhadap buffer kekuatan rendah ion, presipitasi dapat terbentuk di dalam kantung dialisis. Jika endapan meliputi sebagian besar, enzim.
Diperlukan, atau sebagai alternatif tidak sama sekali, sebuah hasil pemurnian. Endapan disentrifugasi. Namun, dalam kolom filtrasi gel, pengembangan endapan isoelektrik bisa menjadi gangguan. Agregat dapat menyumbat kolom, atau diendapkan dan terjebak, mereka tetap di belakang hingga garam dihapus dari campuran protein asli menangkap dan pelarutan kembali endapan. Penghilangan garam dri gel filtrasi hanya mungkin tidak bekerja di bawah kondisi ini.
Presipitasi isoelektrik protein berkelarutan rendah dapat ditingkatkan dengan masuknya zat terlarut yang berkelarutan lebih tinggi. Jadi pelarut organik atau polietilen glikol bersama-sama dengan penyesuaian pH dapat menghasilkan endapan yang diinginkan. Salah satu contoh dari metode dalam pemurnian ragi fosfofruktokinase.
Peningkatan kelarutan (pada pH tertentu dan suhu tertentu) dengan peningkatan konsentrasi garam dikenal sebagai "salting in". Kebalikan dari proses ini, dengan pengenceran atau dialisis, adalah lebih mungkin berguna dalam pemurnian enzim. Sebuah penggaraman khas dalam kurva untuk protein murni, sedangkan stepness dari respon terhadap garam mungkin cukup untuk mendorong pengendapan dengan pengenceran.
Point Catatan Praktek
Presipitat isoelektrik kebanyakan agregat protein yang berbeda dan mungkin termasuk partikulat fragmen dan kompleks protein asam nukleat. Jika komposisi awal larutan berubah, sebuah enzim yang diinginkan mungkin tidak memperlihatkan perilaku kelarutan yang sama. Endapan isoelektrik biasanya terjadi dengan menurunkan pH di bawah pH fisiologis, pastikan enzim stabil pada pH yang dibutuhkan. Menjaga suhu rendah akan meningkatkan kemungkinan stabilitas dan penurunan kelarutan. Namun, jika menyesuaikan pH di 0 oC, jangan lupa untuk standarisasi pH meter pada suhu ini, dengan menggunakan buffer standar es dingin.
Singkatnya, penggaraman dalam rentang dapat dimanfaatkan dalam pemurnian dalam dua cara yang berbeda. Pertama, agregasi dapat terjadi dengan pengenceran atau dialisis, dan jika enzim yang diperlukan hadir dalam pemurnian agregat berguna akan telah dicapai. Kedua, curah isoelektrik dapat digunakan, mengeksploitasi variasi kelarutan dengan pH, tanpa mengubah kekuatan ion. Dalam situasi baik, adalah enzim yang diperlukan tetap dalam larutan, dengan tingkat pemurnian dicapai biasanya minimal sejak proporsi yang relatif kecil dari total protein yang mungkin dalam endapan. Dalam hal ini, apa yang terjadi hanya membersihkan ekstrak.
3.3 Penggaraman Out dengan Konsentrasi Garam Tinggi
Aspek Umum Kelarutan Protein pada Konsentrasi Garam Tinggi
Bagian ini menjelaskan salah satu teknik yang paling banyak digunakan dalam pemurnian enzim, yaitu penggaraman dari protein, dengan kadar garam yang tinggi. Hal ini sangat berbeda dari penggaraman yang berlaku. Meskipun ada kecenderungan untuk tipe protein globulin (mereka yang memiliki kelarutan rendah pada kekuatan ion yang rendah dekat titik isoelektrik mereka) juga untuk menunjukkan kelarutan relatif rendah dalam larutan garam tinggi, ada banyak pengecualian. Jadi serum γ-globulin, protein khas tidak larut pada garam rendah, juga pengendapan dengan amonium sulfat pada konsentrasi yang relatif rendah sekitar 1,5 M. Di sisi lain, beberapa globulin serum lain (α-dan β-) memiliki cukup amonium rata-rata kelarutan sulfat, pengendapan sekitar 2,5 - 3 M. out Penggaraman sebagian besar tergantung pada sifat hidrofobik protein, sedangkan pengasinan di lebih tergantung pada distribusi muatan permukaan dan interaksi polar dengan pelarut.
Sebuah molekul protein yang khas dalam larutan memiliki patch hidrofobik (sisi rantai Phe, Tyr, trp, Leu, Ile, Met, Val). Memaksa ini ke dalam kontak dengan pelarut air menyebabkan sebuah pemesanan molekul air, secara efektif membekukan mereka di sekitar rantai samping. Memesan ini adalah situasi termodinamika tidak stabil karena merupakan penurunan besar dalam entropi dibandingkan dengan protein unsolvated ditambah molekul air gratis.
Jika proses melarutkan protein kering dalam air diwakili oleh mana nH2O mewakili air memerintahkan sekitar residu hidrofobik (kami akan mengabaikan hidrogen terikat dan air terikat kutub dalam deskripsi ini), maka ΔSo besar dan negatif karena tingkat keteraturan diperkenalkan. Proses ini diketahui terjadi, sehingga ΔGo akan cenderung negatif. Akibatnya ΔHo juga sangat negatif (ΔHo = ΔGo + TΔSo). Pertimbangkan dua molekul protein yang datang bersama-sama dan berinteraksi melalui residu hidrofobik, melepaskan air: Jelas ΔSo akan besar dan positif dalam hal ini, perubahan entalpi diharapkan menjadi kira-kira kebalikan dari proses., dan begitu juga akan positif. Sekarang ΔGo mungkin kecil, dan tandanya akan tergantung pada besaran relatif ΔHo dan ΔSo. Dalam konsentrasi garam rendah, protein larut air yang khas. ΔGo akan positif. Karena protein larut, agregasi tidak terjadi untuk setiap tingkat yang signifikan. Namun, jika molekul air dibebaskan terjebak, reaksi dapat dilakukan untuk agregasi kemajuan dan protein akan terjadi. Garam menjadi ion terhidrasi; sehingga menambah jumlah besar perangkap air garam.
Setelah air yang cukup telah menarik diri dari protein, agregasi terjadi. Perhatikan bahwa ΔHo positif untuk reaksi ini. Akibatnya, persamaan Arhenius memprediksi bahwa agregasi terjadi akibat kenaikan kekuatan hidrofobik dengan suhu. Ini adalah fitur yang diakui interaksi hidrofobik. Garam curah dalam banyak kasus memiliki ΔHo positif, karena bentuk endapan lebih pada tingkat garam diberikan pada suhu yang lebih tinggi.
Cara lain untuk menggambarkan agregasi patch hidrofobik pada protein permukaan karena konsentrasi garam tinggi adalah untuk mengatakan bahwa, sebagai ion garam terlarut, ada kecenderungan yang lebih besar, ketika tersedia secara bebas molekul air menjadi searce, untuk menarik dari memerintahkan beku molekul air dari rantai samping hidrofobik, sehingga mengekspos daerah lemak telanjang yang ingin berinteraksi dengan satu sama lain. Protein dengan jumlah yang lebih besar, atau kelompok yang lebih besar untuk residu seperti pada permukaannya, akan menjadi agregat cepat, sedangkan protein dengan sedikit residu permukaan nonpolar dapat tetap berada dalam larutan bahkan pada konsentrasi garam tertinggi. Sifat garam adalah sangat penting di sini; garam-garam yang benar-benar mengikat dan berinteraksi langsung dengan protein memiliki efek destabilisasi. Garam optimum adalah mereka yang mendorong hidrasi daerah kutub (dan dehidrasi daerah hidrofobik) pada protein tanpa interaksi langsung sendiri. kation monovalen dan anion divalen ini tertentu lebih suka kation divalen seperti magnesium, dan anion monovalen seperti klorida yang memiliki kecenderungan yang lebih besar untuk mengikat protein. Interpretasi alternatif dari efek garam pada kelarutan protein yang lebih kompleks melibatkan pertimbangan istilah energi bebas. Efektivitas garam yang berbeda juga telah berkorelasi dengan selisih tegangan permukaan molar karena garam yang terlarut dalam pelarut.
Strating dengan campuran kasar, co-agregasi sangat luas; molekul identik individu tidak akan mencari satu sama lain ketika molekul lain lengket hadiah itu sendiri bersama. Namun demikian, banyak enzim diendapkan dari larutan rentang cukup sempit konsentrasi garam untuk membuat prosedur metode yang sangat efektif fraksinasi. Beberapa hasil pada efek kehadiran protein lain pada kelarutan beberapa enzim.
Sampel tidak murni tidak mengikuti aturan ini, karena kopresipitasi terjadi ke nilai tersebut tergantung pada sifat-sifat ini protein lainnya. Secara umum, kelarutan komponen tertentu menurun dengan adanya protein lain.
Meskipun keluar pengasinan sangat bergantung pada interaksi hidrofobik, fitur lain lakukan mempengaruhi kelarutan. Jadi pH dapat mengubah kelarutan, sebuah penghapusan charge membuat permukaan yang kurang polar. Kelarutan dalam garam biasanya tertinggi sekitar pH 7, dimana protein memiliki kelompok yang paling dikenakan. Di sisi lain, agregasi mungkin terjadi lebih mudah dekat dengan titik isoelektrik protein. Salah satu contoh klasik dari hal ini adalah dalam pemurnian langkah salah satu glyceraldehydes fosfat dehidrogenase (EC 1.2.1.12) dari otot kelinci. Pada pH 6, enzim ini larut dalam amonium sulfat 3,2 M, tetapi jika pH disesuaikan dengan 7,5 atau lebih tinggi, itu presipitat, dan bahkan mungkin mengkristal, dari ekstrak kasar. Titik isoelektriknya (setidaknya pada konsentrasi garam rendah) adalah sekitar 8,5.
Suhu mempengaruhi kelarutan protein pada konsentrasi garam tinggi dengan cara yang tidak biasa karena pengaruh suhu terhadap hidrofobik interaksi seperti dijelaskan di atas. Dalam rentang salting out, kelarutan protein umumnya menurun dengan meningkatnya suhu. Banyak waktu kelarutan protein keruh, disiapkan untuk kristalisasi pada suhu kamar, menjadi benar-benar jelas ketika ditempatkan di 40 oC. Praktis Pertimbangan dalam fraksinasi salting out.
Salting dari protein melibatkan pelarutan garam ke dalam larutan yang mengandung protein. Beberapa fitur dari proses ini harus dipertimbangkan. Sifat garam adalah semua penting. Seseorang harus mempertimbangkan karakteristik fisik seperti kelarutan garam, selain adalah efektivitas dalam menyebabkan presipitasi. Garam yang paling efektif adalah mereka dengan dibebankan beberapa anion seperti sulfat, fosfat, dan sitrat, kation ini relatif kurang penting. Pengasinan keluar kemampuan anion mengikuti seri Hofmeister, yang untuk beberapa anion umum adalah SCN-, CLO4-, NO3-, Br-, Cl-, asetat-, SO42-, PO43-, dll meskipun fosfat akan muncul dari ini menjadi lebih efektif daripada sulfat. Dalam praktik, fosfat pada pH neutural terdiri dari campuran HPO42- dan ion H2PO4-, yang kurang efektif dibandingkan PO43-. Sementara kation, ion monovalen harus digunakan, dengan NH4+> K+> Na+ dalam efektivitas curah hujan. Dari garam murah umum yang efektif dalam menyebabkan curah adalah natrium, kalium, amonium sulfat, fosfat, dan sitrat.
Setelah memutuskan untuk melakukan fraksinasi amonium sulfat, keputusan berikutnya adalah persentase saturasi untuk mencoba. Bahan pengendapan sebelum 25 % jenuh umumnya partikulat dan preaggregatedor protein berat molekul yang sangat tinggi. Distribusi curah hujan khas protein dari ekstrak kasar. Sebuah set ideal dari hasil uji coba dengan fraksionasi amonium sulfat. Fraksionasi selalu merupakan kompromi antara pemulihan aktivitas dan tingkat pemurnian. Jika bahan sumber yang berharga atau sulit diperoleh, atau tujuannya adalah untuk mendapatkan enzim sebanyak mungkin tanpa memperhatikan terlalu banyak untuk kemurnian mutlak, maka tingkat pemurnian mungkin akan dikorbankan untuk pemulihan. Di sisi lain, jika fraksionasi adalah langkah pertama dari bahan sumber tersedia, pemulihan bisa dikorbankan untuk kemurnian. Dalam banyak kasus yang lebih canggih proses (kromatografi pertukaran ion kromatografi afinitas adsorpsi) dapat mengikuti fraksionasi amonium sulfat dan perilaku enzim yang diinginkan mungkin sama terlepas dari jumlah pengotor. Dalam kasus yang memotong luas amonium sulfat dapat digunakan, sehingga pemurnian relatif sedikit, langkah yang pada dasarnya membersihkan.
Solusi untuk garam yang akan ditambahkan harus diberikan dengan sistem pengadukan, dan amonium sulfat padat ditimbang keluar. Setiap benjolan harus dipecah sebelum perlahan menambahkan padatan. Bit pertama bisa dilarutkan dalam cukup cepat, tetapi sebagai persen kejenuhan yang dimaksud adalah kenaikan terakhir mendekati garam harus ditambahkan lebih lambat. Udara terlarut yang keluar dari solusi dan menyebabkan buih, namun tidak ada salahnya dilakukan kecuali overvigorous aduk itu sendiri menyebabkan buih, dalam hal pengaruh tegangan permukaan pada protein yang tertangkap dalam gelembung dapat menyebabkan denaturasi. Setelah bit terakhir garam telah dilarutkan, aduk harus terus selama 10 - 30 menit untuk memungkinkan equilibrium lengkap antara protein terlarut dan agregasi, dibandingkan dengan solusi yang disentrifus. Umumnya sekitar 105 g / menit sudah cukup, yaitu 10.000x g selama 10 menit atau 3.000x g selama 30 menit, meskipun pada konsentrasi garam yang lebih tinggi agak lebih sentrifugasi mungkin diperlukan. Supernatan dialirkan, volume mencatat, dan jumlah garam yang dibutuhkan untuk pemotongan berikutnya dihitung. Endapan dilarutkan dalam buffer yang cocok. Perhatikan bahwa volume buffer perlu tidak lebih dari 1 - 2 kali volume endapan, karena itu akan cukup untuk mengurangi konsentrasi garam di bawah titik pengendapan protein ini. Jika semua endapan tidak larut, bahan larut mungkin didenaturasi / partikulat, dan harus dihilangkan dengan sentrifugasi. Itu selalu yang terbaik untuk menjaga solusi sebagai terkonsentrasi di protein mungkin. Hal ini meningkatkan stabilitas, dan selalu casier untuk mencairkan sesuatu yang lebih dari itu adalah untuk reconcentrate itu.
Endapan dipekatkan mengandung sejumlah besar sulfat amonium, dan biasanya ini harus dihapus sebelum melanjutkan ke langkah berikutnya. Dialisis atau filtrasi gel pada kolom "desalting" adalah metode biasa yang digunakan. Pengukuran aktivitas enzim dapat dilakukan pada endapan dipekatkan atau pada supernatan, tapi berhati-hatilah dalam kasus yang terakhir jumlah amonium sulfat ditambahkan ke dalam campuran dengan sampel bisa mengganggu tes tersebut; endapan selalu harus diuji pula, untuk meskipun kerugian dalam fraksinasi amonium sulfat biasanya kecil, aktivitas sembuh dalam endapan mungkin tidak sebanyak perbedaan antara supernatant berturut-turut.
Daripada melarutkan garam yang solid ke dalam sampel, dimungkinkan untuk menambah volume yang cocok larutan jenuh, bukan dalam cara yang sama seperti menambahkan pelarut organik. Hal ini sangat berguna jika enzim ini semua dipicu oleh kejenuhan 50%, karena hal ini hanya akan melibatkan meningkat dua kali lipat volume. Pada skala besar ini akan diterima, tetapi dalam skala kecil dapat menjadi metode yang tepat. Persen lebih tinggi masih lebih membutuhkan peningkatan dalam volume, dan dilusi dari protein mengarah ke kebutuhan kejenuhan persen masih lebih tinggi untuk presipitasi setara, sehingga metode ini tidak disarankan untuk pergi jauh di atas 50%.
Hal penting untuk diingat adalah bahwa garam pernah presipitat semua enzim, tetapi hanya mengurangi kelarutan nya. Jika campuran mulai mengandung enzim Anda, katakanlah, 1 mg mL-1, kemudian pengurangan dalam kelarutan untuk 0,1 mg mL-1 menyebabkan 90% dari itu untuk mengendapkan. Ini akan menjadi pemulihan diterima. Di sisi lain, jika enzim Anda hanya pada 0,1 mg mL-1 untuk memulai dengan, konsentrasi garam yang sama tidak akan menyebabkan pengendapan apapun. Dengan kata lain, konsentrasi garam jangkauan untuk curah bukanlah milik absolut dari enzim yang bersangkutan, namun tergantung pada sifat-sifat protein lain yang hadir (kopresipitasi) dan pada konsentrasi protein dalam larutan awal. Konsentrasi garam yang berbeda mungkin diperlukan pada tahapan yang berbeda dalam prosedur pemurnian.
Akhirnya, aplikasi penting dari prosedur penggaraman AOU tidak begitu banyak untuk sampel fraksionasi, tetapi untuk konsentrasinya. Sebuah cluate dari kolom pertukaran ion atau dari filtrasi gel mungkin perlu berkonsentrasi. Penggaraman keluar dengan menambahkan amonium sulfat yang cukup untuk mengendapkan semua protein adalah cara yang efisien untuk melakukan hal ini asalkan sampel tidak terlalu encer untuk mulai dengan. Hal ini mudah untuk larut dalam amonium sulfat 60 g untuk setiap 100 mL, untuk memberikan sekitar 85% jenuh larutan. Beberapa protein memiliki kelarutan lebih dari 0,1 mg mL-1 pada tingkat amonium sulfat. Tetapi jika konsentrasi protein mulai kurang dari 1 mg mL-1. Salah satu harus mencoba untuk meningkatkan ini dengan, misalnya, ultrafiltrasi sebelum salting out.

Isolasi Etil p-metoksisinamat dari Kencur (Kaempferia galanga)

Sekilas Tentang Kencur Kaempferia galanga)
Merupakan tanaman tropis yang banyak tumbuh di berbagai daerah di Indonesia sebagai tanaman yang dipelihara
Banyak digunakan sebagai ramuan obat tradisional dan sebagai bumbu masakan
Rimpang kencur terdapat di dalam tanah, bergerombol, dan bercabang-cabang dengan induk rimpang di tengah.
Daun kencur berbentuk bulat lebar, tumbuh mendatar di atas permukaan tanah dengan jumlah daun tiga sampai empat helai
Bunga kencur berwarna putih, berbau harum, terdiri dari empat helai daun mahkota
Taksonomi
Kerajaan : Plantae
Divisi : Spermatophyta
Subdivisi : Angiospermae
Klas : Monocotyledonae
Ordo : Zingiberales
Famili : Zingiberaceae
Subfamili : Zingiberoideae
Genus : Kaempferia
Spesies : Kaempferia galanga
Kandungan Kimia Kencur
1. etil sinamat, 2. etil p-metoksisinamat,
3. p-metoksistiren, 4. karen, 5. borneol, 6. parafin
Sekilas Tentang Etil p-metoksisinamat
Merupakan senyawa tabir surya yang mampu melindungi kulit oleh radiasi sinar ultraviolet dari matahari
Senyawa aktif yang ditambahkan pada lotion
Keunikan manfaat dari etil p-metoksisinamat membuat kami tertarik untuk mengisolasinya dari sumbernya di alam yakni pada kencur
Maka dilakukanlah percobaan ini
Maksud, Tujuan, dan Prinsip Percobaan
Maksud percobaan : mengetahui dan mempelajari bagaimana metode isolasi senyawa dari suatu bahan alam
Tujuan percobaan : menentukan metode isolasi etil p-metoksisinamat dari kencur (Kaempferia galanga)
Prinsip Percobaan : kencur yang telah dibersihkan, diblender sampai halus, dan dijemur beberapa hari dimaserasi dengan menggunakan pelarut etanol kemudian ekstraknya dievaporasi lalu didinginkan hingga terbentuk kristal, lalu kristal yang terbentuk tersebut direkristalisasi kembali dengan pelarut etanol kemudian dipanaskan lalu didinginkan hingga terbentuk kristal putih, kemudian dilakukan uji kualitatif melalui pengamatan berkas noda di bawah lampu uv, warna biru atau hijau menandakan keberadaan etil p-metoksisinamat
Bahan dan Alat Percobaan
Bahan percobaan yakni rimpang kencur, etanol, n-heksana, akuades, dan kertas saring.
Alat percobaan yakni pisau, nampan, blender, toples, evaporator rotary, Erlenmeyer 1000 mL, Erlenmeyer 250 mL, labu Buchner, corong Buchner, aspirator air, gelas kimia 250 mL, penangas air, pipet tetes, dan lampu sinar uv.
Prosedur Percobaan
Preparasi sampel
Isolasi etil p-metoksisinamat dari kencur (kaempferia galanga)
Uji kualitatif keberadaan etil p-metoksisinamat
Preparasi Sampel
Sebanyak 10 kg kencur dibersihkan dan dikupas sampai kulit dasar terpisah hingga yang tertinggal hanya bagian yang putih
Kencur diblender sampai halus
Kencur yang telah halus dijemur selama 3-4 hari tanpa kena sinar matahari
Setelah kencur yang dijemur berwarna coklat muda, dikumpulkan menjadi satu dan dibuat menjadi tepung
Isolasi etil p-metoksisinamat
Sebanyak 400 gram bubuk kencur dimasukkan ke dalam Erlenmeyer 1000 mL, lalu dimaserasi dengan 500 mL etanol kurang lebih selama 1 minggu
Dikeluarkan ekstrak kencur lalu diuapkan dengan rotary evaporator kemudian didinginkan hingga terbentuk kristal kemudian disaring dan diambil kristalnya
Kristal yang terbentuk dilarutkan kembali dengan pelarut etanol sesedikit mungkin kemudian ditetesi sedikit demi sedikit n-heksana untuk mengendapkan pengotor yang mungkin ada dalam larutan lalu disaring untuk mengambil filtratnya
Filtrat dievaporator rotary untuk menguapkan pelarut lalu didinginkan hingga terbentuk kristal
Uji Kualitatif Keberadaan Etil p-metoksisinamat
Kristal putih etil p-metoksisinamat dilarutkan dalam pelarut etanol kemudian larutan yang terbentuk diteteskan 2-3 tetes di atas kertas saring
Berkas noda pada kertas saring diamati di bawah sinar lampu uv
Noda biru atau hijau yang terlihat menandakan terdapatnya etil p-metoksisinamat
Syukran jazakumullah khair
Powered by Blogger